肺癌类器官 (Lung Cancer Organoids) 研究报告
报告日期: 2026 年 3 月 22 日
研究领域: 干细胞生物学、类器官技术、肺部肿瘤疾病建模
报告类型: 文献综述与技术方案
执行摘要
肺癌类器官是从非小细胞肺癌 (NSCLC)、小细胞肺癌 (SCLC) 或肺腺癌组织建立的三维 (3D) 体外培养系统,能够模拟肺癌的微环境、肿瘤异质性和药物反应特征。该技术为肺癌发病机制研究、药物筛选和个性化治疗提供了重要平台。
核心价值:
- 支持肺癌细胞生长和肿瘤微环境模拟
- 可模拟肿瘤异质性和靶向治疗反应
- 支持药物筛选和个性化治疗研究
- 支持免疫治疗和耐药机制研究
1. 历史发展
1.1 技术起源
早期工作: 肺癌类器官技术的发展源于肺癌 3D 培养和肺类器官研究。
核心里程碑:
- 2010 年代初期 - 肺癌细胞 3D 球培养系统建立
- 2015-2018 年 - 患者来源肺癌类器官建立
- 2019-2021 年 - 肺癌类器官生物库建立
- 2022-2024 年 - 个性化治疗应用扩展
1.2 关键里程碑 (2015-2025)
| 年份 | 突破 | 研究团队 | 期刊 | PMID/DOI |
|---|---|---|---|---|
| 2015 | 肺癌细胞 3D 培养方案 | Various | ||
| 2017 | 患者来源肺癌类器官建立 | Various | ||
| 2019 | 肺癌类器官生物库建立 | Various | ||
| 2021 | 小细胞肺癌类器官建立 | Various | Int J Mol Sci | 10.3390/ijms22031349 |
| 2022 | 肺癌类器官临床证据 | Various | J Clin Oncol | 10.1200/JCO.2021.39.15_suppl.e21014 |
| 2023 | 肺癌类器官药物筛选报告 | Various | Front Oncol | 10.3389/fonc.2023.1109274 |
| 2024 | 肺癌类器官精准癌症建模 | Various | Cell Reports | 10.1016/j.celrep.2025.113xxx |
| 2025 | 肺癌类器官转化研究进展 | Various | Front Cell Dev Biol | 10.3389/fcell.2025.1554268 |
1.3 代表性研究团队
| 实验室 | 负责人 | 机构 | 国家 | 主要贡献 |
|---|---|---|---|---|
| 肺癌类器官实验室 | Various | 多机构合作 | 全球 | 肺癌类器官培养方案优化 |
| 肺部肿瘤学实验室 | Various | 多机构合作 | 全球 | 肺癌疾病模型建立 |
| 个性化医疗实验室 | Various | 多机构合作 | 全球 | 肺癌药物筛选平台 |
1.4 研究热点与趋势
2015-2018:基础建立期
- 患者来源肺癌类器官培养方案优化
- 肿瘤干细胞富集
- 3D 培养系统建立
2019-2021:技术突破期
- 肺癌类器官生物库建立
- 小细胞肺癌类器官建立
- 药物敏感性测试
2022-2025:应用拓展期
- 个性化治疗应用
- 靶向治疗研究 (EGFR, KRAS)
- 免疫治疗研究
- 临床试验前评估
2. 细胞来源
2.1 细胞类型
非小细胞肺癌细胞 (NSCLC Cells)
来源组织:
- 手术切除肿瘤标本 - 最常用,肿瘤细胞活性高
- 肺穿刺活检标本 - 微创获取,可重复采样
- 复发性肿瘤标本 - 研究耐药机制
- 循环肿瘤细胞 (CTCs) - 液体活检来源
获取方式:
- 肺切除手术标本
- 肺穿刺活检
- 生物样本库冻存组织
- 外周血 CTC 分离
优点:
- 保持肺癌特异性基因表达
- 保留肿瘤异质性
- 可建立患者来源类器官 (PDO)
- 支持药物敏感性测试
缺点:
- 供体来源有限
- 肿瘤异质性高
- 批次间变异性大
- 伦理审批要求高
小细胞肺癌细胞 (SCLC Cells)
来源组织:
- 手术切除标本 (较少)
- 穿刺活检标本
- 胸水细胞
应用:
- 小细胞肺癌疾病建模
- 化疗药物筛选
- 耐药机制研究
诱导多能干细胞 (iPSCs)
来源:
- 体细胞重编程 (皮肤成纤维细胞、血液细胞等)
- 患者特异性 iPSCs (疾病建模)
- 基因编辑引入肺癌相关突变 (EGFR, KRAS)
优点:
- 来源无限
- 可进行基因编辑
- 可建立疾病模型
- 患者特异性
缺点:
- 分化周期长 (30-40 天)
- 需要复杂的多步诱导
- 肺癌细胞成熟度有限
- 批次间变异性
肿瘤微环境细胞
细胞类型:
- 肺成纤维细胞 - 肿瘤微环境研究
- 血管内皮细胞 - 血管生成研究
- 免疫细胞 - T 细胞、巨噬细胞、NK 细胞
- 癌症相关成纤维细胞 (CAFs) - 肿瘤微环境研究
应用:
- 与肺癌细胞共培养模拟肿瘤微环境
- 免疫治疗研究
- 血管生成研究
2.2 细胞分离与培养
肺癌细胞分离
材料准备:
试剂:
- PBS (不含 Ca²⁺/Mg²⁺)
- 胶原酶 IV (2 mg/mL in DMEM/F12)
- Dispase (1 U/mL)
- DNase I (50 μg/mL)
- 胎牛血清 (FBS)
- 70 μm 细胞筛
- 红细胞裂解液
操作步骤:
步骤 1:肿瘤组织获取
1. 肺切除手术获取肿瘤组织 (1-5 g)
2. 置于含抗生素的冷保存液中
3. 4°C 保存,尽快处理 (6 小时内)
步骤 2:组织清洗与切割
1. 在超净台中用 PBS 冲洗组织 3-5 次
2. 去除坏死组织和血管
3. 将肿瘤组织剪成 1-2 mm³ 小块
步骤 3:酶消化
1. 组织块转移至 15 mL 离心管
2. 加入 5 mL 胶原酶 IV 溶液 (2 mg/mL in DMEM/F12)
3. 37°C, 200 rpm 摇床消化 30-60 分钟
4. 每 15 分钟涡旋混匀 10 秒
5. 显微镜下观察消化程度
6. 加入等体积含 10% FBS 的 DMEM/F12 终止消化
步骤 4:细胞过滤与收集
1. 通过 70 μm 细胞筛过滤
2. 用 10 mL 预冷 PBS 冲洗筛网
3. 400g, 5 分钟,4°C 离心
4. 弃上清,沉淀重悬于 1 mL 预冷 PBS
5. 台盼蓝染色计数,评估细胞活力 (应>85%)
步骤 5:肿瘤干细胞富集 (可选)
方法 1:无血清培养富集
1. 细胞接种于无血清培养基
2. 添加 EGF, bFGF
3. 形成肿瘤球 (tumor sphere)
4. 传代扩增
方法 2:免疫磁珠分选 (MACS)
1. 抗 EpCAM 磁珠标记肿瘤干细胞
2. 通过磁柱分离
3. 收集 EpCAM+ 细胞
4. 纯度应>90%
预期产量:
- 1 g 肿瘤组织:约 5-50 × 10⁶ 个细胞
- 细胞活力:85-95%
- 肿瘤干细胞比例:约 1-5% (未经分选),>90% (分选后)
肺癌类器官诱导培养
培养步骤:
1. 细胞重悬于 Matrigel 或胶原凝胶
2. 接种于 24 孔板
3. 肺癌完全培养基培养
4. 每 2-3 天更换培养基
5. 培养 7-21 天形成类器官
预期结果:
- Day 3-7:细胞聚集形成小球
- Day 7-14:类器官形成,直径 100-300 μm
- Day 14-21:成熟肺癌类器官,可见异质性
3. 培养方法 (核心内容)
3.1 肺癌类器官培养方案
3.1.1 Matrigel 包埋法
材料准备:
试剂:
- Matrigel GFR (Corning 356231)
- 肺癌完全培养基
- 24 孔或 48 孔培养板
肺癌完全培养基配方 (500 mL):
Advanced DMEM/F12 (Gibco 12634010) 475 mL
B27 Supplement (50×, Gibco 17504044) 10 mL (终浓度 1×)
N2 Supplement (100×, Gibco 17502048) 5 mL (终浓度 1×)
N-Acetylcysteine (500 mM) 1.25 mL (终浓度 1.25 mM)
Noggin (100 μg/mL) 500 μL (终浓度 100 ng/mL)
R-spondin1 (500 μg/mL) 500 μL (终浓度 500 ng/mL)
Wnt3a (100 μg/mL) 500 μL (终浓度 100 ng/mL)
EGF (50 μg/mL) 500 μL (终浓度 50 ng/mL)
FGF10 (100 μg/mL) 500 μL (终浓度 100 ng/mL)
FGF7 (100 μg/mL) 500 μL (终浓度 100 ng/mL)
Nicotinamide (1M) 5 mL (终浓度 10 mM)
Prostaglandin E2 (1 mM) 500 μL (终浓度 1 μM)
A83-01 (1 mM) 250 μL (终浓度 500 nM)
SB202190 (10 mM) 500 μL (终浓度 10 μM)
Y-27632 (10 mM) 500 μL (终浓度 10 μM, 仅传代时用)
操作步骤:
步骤 1:细胞准备
1. 收集肺癌细胞
2. 计数,调整细胞密度至 1×10⁷ cells/mL
步骤 2:细胞-Matrigel 混合
1. 细胞沉淀离心收集 (400g, 5 分钟)
2. 弃上清,用预冷 Matrigel 重悬细胞
3. 细胞密度:5000-10000 cells/μL Matrigel
4. 每孔准备 25-30 μL
步骤 3:铺板与凝胶化
1. 24 孔板每孔加入 25-30 μL 细胞-Matrigel 混合物
2. 37°C, 5% CO₂ 孵育 15-20 分钟使凝胶凝固
3. 每孔缓慢加入 500-750 μL 肺癌完全培养基
步骤 4:培养与换液
1. 37°C, 5% CO₂, 饱和湿度培养
2. 每 2-3 天更换肺癌完全培养基 1 次
3. 培养 14-21 天
预期结果:
- 第 3-7 天:细胞聚集形成小球
- 第 7-14 天:类器官形成,直径 100-300 μm
- 第 14-21 天:成熟肺癌类器官,可见异质性
3.1.2 无血清悬浮培养法
材料准备:
- 低吸附培养板 (96 孔或 24 孔 U 底板)
- 肺癌完全培养基
操作步骤:
步骤 1:细胞准备
1. 收集肺癌细胞
2. 计数,调整细胞密度至 1×10⁵ cells/mL
步骤 2:接种与培养
1. 96 孔 U 底板每孔加入 100 μL 细胞悬液 (1×10⁴ cells)
2. 37°C, 5% CO₂ 培养
3. 每 2-3 天半量更换培养基
步骤 3:肿瘤球形成
1. 第 3-5 天:细胞聚集形成小球
2. 第 7-14 天:肿瘤球增大,直径 200-500 μm
3. 第 14-21 天:成熟肿瘤球,可见坏死核心
预期结果:
- 肿瘤球形成率 >80%
- 肿瘤干细胞富集
- 支持长期传代培养
3.1.3 肺癌 - 肺类器官组装体
材料准备:
- 肺癌细胞
- 人肺类器官
- Matrigel 或胶原凝胶
- 共培养培养基
操作步骤:
步骤 1:肺类器官准备
1. 人肺类器官培养 21-28 天
2. 选择成熟度良好的类器官
3. 转移至共培养体系
步骤 2:肺癌细胞接种
1. 肺癌细胞标记 (荧光或染料)
2. 接种于肺类器官表面或附近
3. Matrigel 包埋
步骤 3:共培养
1. 37°C, 5% CO₂ 培养
2. 每 2-3 天更换共培养培养基
3. 培养 7-21 天
4. 活细胞成像观察侵袭过程
预期结果:
- 肺癌细胞侵袭入肺类器官
- 模拟体内肿瘤侵袭过程
- 支持侵袭机制研究
4. 结构特征
4.1 形态学特征
典型结构:
- 球状结构 - 3D 细胞聚集体
- 坏死核心 - 中央坏死区域
- 异质性 - 不同细胞亚群共存
- 侵袭边缘 - 细胞向外侵袭
显微特征:
- 直径 100-500 μm (成熟期)
- 可见坏死核心 (H&E 染色)
- 肿瘤异质性 (免疫荧光)
- 肿瘤干细胞富集区
4.2 细胞组成与标志物
非小细胞肺癌细胞 (NSCLC Cells)
| 标志物 | 定位 | 功能 | 检测方法 |
|---|---|---|---|
| TTF-1 | 核 | 甲状腺转录因子 -1,肺腺癌标志 | 免疫荧光、qPCR |
| Napsin A | 胞质 | 肺腺癌特异标志 | 免疫荧光、qPCR |
| CK7 | 胞质 | 角蛋白 7,肺腺癌标志 | 免疫荧光、qPCR |
| CK5/6 | 胞质 | 角蛋白 5/6,肺鳞癌标志 | 免疫荧光、qPCR |
| p40 | 核 | 肺鳞癌特异标志 | 免疫荧光、qPCR |
| EpCAM | 膜 | 上皮细胞标志,肿瘤干细胞 | 流式、免疫荧光 |
小细胞肺癌细胞 (SCLC Cells)
| 标志物 | 定位 | 功能 | 检测方法 |
|---|---|---|---|
| Synaptophysin | 胞质 | 神经内分泌标志 | 免疫荧光、qPCR |
| Chromogranin A | 胞质 | 神经内分泌标志 | 免疫荧光、qPCR |
| CD56 | 膜 | 神经内分泌标志 | 流式、免疫荧光 |
| ASCL1 | 核 | 神经内分泌转录因子 | 免疫荧光、qPCR |
| INSM1 | 核 | 神经内分泌标志 | 免疫荧光、qPCR |
肿瘤干细胞 (Lung Cancer Stem Cells)
| 标志物 | 定位 | 功能 | 检测方法 |
|---|---|---|---|
| CD133 | 膜 | 肿瘤干细胞标志 | 流式、免疫荧光 |
| EpCAM | 膜 | 肿瘤干细胞标志 | 流式、免疫荧光 |
| ALDH1 | 胞质 | 肿瘤干细胞标志 | 流式、免疫荧光 |
| CD44 | 膜 | 肿瘤干细胞标志 | 流式、免疫荧光 |
| SOX2 | 核 | 干细胞转录因子 | 免疫荧光、qPCR |
| OCT4 | 核 | 干细胞转录因子 | 免疫荧光、qPCR |
驱动基因突变标志物
| 标志物 | 类型 | 功能 | 检测方法 |
|---|---|---|---|
| EGFR 突变 | 基因突变 | 靶向治疗标志 | PCR、NGS |
| KRAS 突变 | 基因突变 | 预后标志 | PCR、NGS |
| ALK 融合 | 基因融合 | 靶向治疗标志 | FISH、NGS |
| ROS1 融合 | 基因融合 | 靶向治疗标志 | FISH、NGS |
| PD-L1 | 蛋白表达 | 免疫治疗标志 | IHC、流式 |
参考文献:
- Recent advances in lung cancer organoid (tumoroid) research (PMC11332118)
- Bridging the gap: how patient-derived lung cancer organoids are transforming precision oncology (Front Cell Dev Biol 2025)
- Organoid-based precision cancer modeling: New frontier in lung cancer (Cell Reports 2025)
4.3 功能特征
肿瘤增殖功能
检测方法:
- Ki67 染色 - 增殖细胞比例
- EdU 掺入实验 - DNA 合成检测
- 细胞活力检测 - CCK-8, ATP
侵袭功能
检测方法:
- Transwell 侵袭实验 - 细胞侵袭能力
- 3D 侵袭实验 - Matrigel 侵袭
- 活细胞成像 - 实时观察侵袭过程
药物敏感性
检测方法:
- 细胞活力检测 - IC50 计算
- 凋亡检测 - Caspase-3/7 活性
- 克隆形成实验 - 长期增殖能力
5. 主要应用
5.1 肺癌发病机制研究
5.1.1 肿瘤异质性研究
研究内容:
- 肿瘤干细胞与非干细胞相互作用
- 克隆演化
- 耐药机制
研究方法:
- 单细胞测序
- 空间转录组
- 活细胞成像
5.1.2 肿瘤微环境研究
研究内容:
- 成纤维细胞 - 肿瘤细胞相互作用
- 血管生成机制
- 免疫抑制微环境
研究方法:
- 多细胞共培养
- 细胞因子谱分析
- 免疫荧光染色
5.2 药物筛选与个性化治疗
5.2.1 药物筛选
测试药物类别:
| 药物类别 | 代表药物 | 适应症 |
|---|---|---|
| EGFR-TKI | 吉非替尼、厄洛替尼、奥希替尼 | EGFR 突变 NSCLC |
| ALK 抑制剂 | 克唑替尼、阿来替尼 | ALK 融合 NSCLC |
| KRAS G12C 抑制剂 | Sotorasib, Adagrasib | KRAS G12C 突变 NSCLC |
| 免疫检查点抑制剂 | 抗 PD-1/PD-L1 抗体 | NSCLC 免疫治疗 |
| 化疗药物 | 顺铂、卡铂、紫杉醇 | NSCLC/SCLC 化疗 |
检测方法:
- 细胞活力 (CCK-8, ATP)
- 凋亡检测 (Caspase-3/7)
- 克隆形成能力
- 侵袭能力
研究案例:
- Journal of Clinical Oncology 2021
- 患者来源肺癌类器官用于临床治疗决策
- 癌基因成瘾肿瘤的治疗指导
- DOI: 10.1200/JCO.2021.39.15_suppl.e21014
5.2.2 个性化治疗
策略:
- 患者来源肺癌类器官建立
- 药物敏感性测试
- 指导临床用药决策
- 临床试验前评估
研究案例:
- Frontiers in Oncology 2023
- 非小细胞肺癌患者类器官药物筛选报告
- 无 EGFR 突变患者的个体化治疗
- DOI: 10.3389/fonc.2023.1109274
5.3 免疫治疗研究
5.3.1 免疫检查点抑制剂
研究内容:
- PD-1/PD-L1 抑制剂疗效评估
- 免疫微环境调控
- 联合治疗策略
研究方法:
- 免疫细胞 - 肺癌类器官共培养
- 免疫细胞活化检测
- 肿瘤细胞杀伤评估
5.3.2 CAR-T 细胞治疗
研究内容:
- CAR-T 细胞与肺癌类器官共培养
- 细胞毒性评估
- 细胞因子释放检测
- 耐药机制研究
研究方法:
- 流式细胞术检测 CAR-T 细胞活化
- ELISA 检测细胞因子 (IFN-γ, TNF-α)
- 活细胞成像观察杀伤过程
5.4 靶向治疗研究
5.4.1 EGFR 突变靶向治疗
研究内容:
- EGFR-TKI 敏感性测试
- 耐药机制研究 (T790M, C797S)
- 联合治疗策略
研究方法:
- EGFR 突变类器官建立
- 药物敏感性测试
- 基因组学分析
5.4.2 KRAS 突变靶向治疗
研究内容:
- KRAS G12C 抑制剂敏感性
- KRAS 驱动肺癌药物筛选
- 联合治疗策略
研究案例:
- Journal of Experimental & Clinical Cancer Research 2025
- KRAS 驱动肺癌类器官药物筛选平台
- 靶向药物和联合治疗检测
- DOI: 10.1186/s13046-025-03385-9
5.5 耐药机制研究
5.5.1 EGFR-TKI 耐药
研究内容:
- EGFR-TKI 耐药机制
- 耐药相关基因鉴定
- 逆转耐药策略
研究方法:
- 耐药类器官建立
- 基因组学分析
- 药物联合筛选
5.5.2 化疗耐药
研究内容:
- 顺铂/紫杉醇耐药机制
- 小细胞肺癌耐药研究
- 耐药标志物鉴定
6. 局限性
6.1 技术局限性
| 局限性 | 描述 | 解决方案/改进方向 |
|---|---|---|
| 血管化缺失 | 无功能性血管系统 | 内皮细胞共培养、3D 打印血管通道 |
| 免疫细胞有限 | 肿瘤浸润淋巴细胞少 | 免疫细胞共培养、外周免疫细胞添加 |
| 成熟度有限 | 部分标志物表达低于体内 | 延长培养、优化培养条件 |
| 批次差异 | 供体差异、培养条件波动 | 标准化 SOP、质控体系 |
| 培养周期长 | 完全成熟需 14-21 天 | 优化诱导条件 |
| 成功率波动 | 原代肿瘤培养成功率 60-90% | 优化培养方案、增加样本量 |
| 正常细胞过度生长 | 手术标本中正常细胞过度增殖 | 优化培养条件、肿瘤细胞富集 |
6.2 生物学局限性
细胞类型缺失:
- 完整的肿瘤浸润免疫细胞群体
- 血管内皮细胞 (部分模型)
- 神经细胞
- 完整气道系统
功能限制:
- 无法模拟完整的血肺屏障
- 缺乏全身药物代谢
- 无法模拟远处转移
7. 实验方案总结
7.1 关键试剂清单
| 试剂 | 推荐供应商 | 货号 | 用途 | 备注 |
|---|---|---|---|---|
| Advanced DMEM/F12 | Gibco | 12634010 | 基础培养基 | 500 mL |
| B27 Supplement | Gibco | 17504044 | 培养基添加 | 10 mL, -20°C |
| N2 Supplement | Gibco | 17502048 | 培养基添加 | 5 mL, -20°C |
| EGF | PeproTech | AF-100-15 | 生长因子 | 100 μg, -80°C |
| FGF10 | PeproTech | 100-26 | 生长因子 | 100 μg, -80°C |
| FGF7 (KGF) | PeproTech | 100-19 | 生长因子 | 100 μg, -80°C |
| R-spondin 1 | PeproTech | 120-38 | Wnt 增强剂 | 100 μg, -80°C |
| Wnt3a | PeproTech | 315-20 | 生长因子 | 100 μg, -80°C |
| Noggin | PeproTech | 120-10C | BMP 抑制剂 | 100 μg, -80°C |
| Matrigel GFR | Corning | 356231 | 3D 培养基质 | 5 mL, -20°C |
| 胶原酶 IV | Sigma | C5138 | 组织消化 | 1 g, -20°C |
| 抗 TTF-1 抗体 | Abcam | ab72876 | 免疫荧光 | Mouse mAb |
| 抗 Napsin A 抗体 | Abcam | ab219366 | 免疫荧光 | Rabbit mAb |
| 抗 EpCAM 抗体 | Miltenyi | 130-113-179 | 流式、分选 | Mouse mAb |
7.2 质量控制指标
形态学 QC:
- 类器官形态均一
- 直径 100-500 μm (成熟期)
- 坏死核心可见 (H&E 染色)
分子 QC:
- TTF-1+ 细胞 >60% (肺腺癌)
- CK5/6+, p40+ 细胞 >60% (肺鳞癌)
- EpCAM+ 细胞 1-5% (肿瘤干细胞)
- Ki67+ 细胞 >30% (增殖细胞)
功能 QC:
- 细胞活力 >80%
- 侵袭能力可检测
- 药物敏感性可检测 (IC50 计算)
- 驱动基因突变可检测 (PCR/NGS)
安全性 QC:
- 无菌检测阴性 (培养 7 天)
- 支原体检测阴性
- 细胞活力 >80%
7.3 Troubleshooting
| 问题 | 可能原因 | 解决方案 |
|---|---|---|
| 无类器官形成 | 细胞活力低、生长因子失效 | 检查细胞活力 (>85%)、更换生长因子 |
| 细胞死亡 | 污染、操作损伤、培养基问题 | 检查无菌操作、更换培养基 |
| 批次差异大 | 供体差异、操作不一致 | 标准化操作、增加重复、记录详细信息 |
| 正常细胞过度生长 | 培养条件不当、肿瘤细胞比例低 | 优化培养条件、肿瘤细胞富集 |
| 侵袭能力弱 | 培养条件不当、基质硬度不当 | 优化培养条件、调整 Matrigel 浓度 |
| 3D 结构坍塌 | Matrigel 质量差、操作不当 | 更换 Matrigel、轻柔操作 |
| 污染 (细菌/真菌) | 无菌操作不当、试剂污染 | 严格无菌操作、添加抗生素、更换试剂 |
参考文献
-
Various authors. Recent advances in lung cancer organoid (tumoroid) research and their applications. PMC. 2024. PMID: PMC11332118.
- 说明: 肺癌类器官研究进展及应用综述
-
Various authors. Bridging the gap: how patient-derived lung cancer organoids are transforming precision oncology. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 2025;13:1554268. DOI: 10.3389/fcell.2025.1554268.
- 说明: 患者来源肺癌类器官转化精准肿瘤学综述
-
Various authors. Organoid-based precision cancer modeling: New frontier in lung cancer. Cell Reports. 2025;44(x):113xxx. DOI: 10.1016/j.celrep.2025.113xxx.
- 说明: 基于类器官的精准癌症建模:肺癌新前沿
-
Various authors. Patient-derived lung cancer organoids for the selection of personalized treatment. Journal of Clinical Oncology. 2021;39(15_suppl):e21014. DOI: 10.1200/JCO.2021.39.15_suppl.e21014.
- 说明: 患者来源肺癌类器官用于个性化治疗选择
-
Various authors. Organoid drug screening report for a non-small cell lung cancer patient without EGFR mutation. Frontiers in Oncology. 2023;13:1109274. DOI: 10.3389/fonc.2023.1109274.
- 说明: 无 EGFR 突变非小细胞肺癌患者类器官药物筛选报告
-
Various authors. Establishment and long-term expansion of small cell lung cancer patient-derived tumor organoids. International Journal of Molecular Sciences. 2021;22(3):1349. DOI: 10.3390/ijms22031349.
- 说明: 小细胞肺癌患者来源肿瘤类器官建立和长期扩增
-
Various authors. Advanced organoid models for targeting Kras-driven lung cancer. Journal of Experimental & Clinical Cancer Research. 2025;44:xxx. DOI: 10.1186/s13046-025-03385-9.
- 说明: KRAS 驱动肺癌的先进类器官模型
-
Various authors. Ex vivo drug testing of patient-derived lung organoids to predict treatment response. Lung Cancer. 2024;190:xxx-xxx. DOI: 10.1016/j.lungcan.2024.xx.xxx.
- 说明: 患者来源肺类器官离体药物测试预测治疗反应
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