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OVB-类器官 vs 大脑类器官多尺度对比分析

Yang J, Zhang X, Li S, Gao Z et al. | Cells 2026 | DOI: 10.3390/cells15080703
标签: #类器官 #大脑皮层 #视泡 #FOXG1 #VSX2 #TEM #转录组 #眼-脑协同发育


一、做什么 🔬

研究背景:现有的脑类器官培养体系(cerebral organoids)虽能产生多种脑区类型的神经元,但无法模拟胚胎发育过程中"视泡-大脑"器官间互作。这一缺失限制了早期眼-脑协同发育机制的研究,以及视网膜病变神经发育起源的疾病建模。本研究建立了一种新型"含视泡的大脑类器官"(OVB-organoids),并与标准大脑类器官进行多尺度对比。

核心问题:

研究模型:来自同一 hiPSC 株的两组类器官——cerebral organoids(Cerebral 组)与 optic vesicle-containing brain organoids(OVB 组),培养至 Day 30。

技术路线:


二、发现什么 📊

核心发现 1:标准化培养 + 视泡诱导可生成 OVB-organoids

图1:Protocol

图1:Cerebral organoids(A)与 OVB-organoids(B)的培养协议示意图。横箭头=发育过程,竖箭头=发育节点。

维度 说明
做了什么 标准化两套培养协议,Cerebral 组不加 Vitamin A,OVB 组在神经球阶段补充 Vitamin A 激活视黄酸通路;orbital shaker 65 rpm 培养至 Day 30
发现什么 两组均能稳定生成 3D 类器官结构;OVB 组形成可见的视泡样凸起结构(vs Cerebral 组无)
说明什么 为后续多尺度对比提供了"同源异构"的两组对照模型,避免了因细胞株差异导致的混杂

核心发现 2:Cerebral 组呈现典型大脑类器官特征

图2:Cerebral Day 30 IF

图2:Cerebral organoids 在 Day 30 的免疫荧光染色。Ki67/SOX2、Nestin/SOX2、PAX6、MAP2 共染 + DAPI。

维度 说明
做了什么 切片共染 Ki67(增殖)+ SOX2(NSC)+ Nestin(NSC)+ PAX6(皮层命运)+ MAP2(成熟神经元)+ DAPI(核)
发现什么 Ki67+/SOX2+ 增殖性 NSC 大量存在;Nestin+/SOX2+ 围绕中央腔呈极性神经上皮样结构;PAX6 广泛分布;MAP2 部分阳性
说明什么 Cerebral organoids 处于"动态发育阶段":NSC 维持 + 分化 + 成熟神经元生成同步进行,符合大脑类器官的经典特征

核心发现 3:OVB 组同时表达 FOXG1 与 VSX2 —— 多结构发育

图3:OVB Day 30 IF

图3:OVB-organoids 在 Day 30 的免疫荧光染色。FOXG1(端脑)+ VSX2(视杯)共表达是本研究最关键的细胞学证据。

维度 说明
做了什么 切片共染 FOXG1(端脑发育关键调控因子)+ VSX2(视杯发育 marker)+ Ki67/SOX2 + Nestin + MAP2 + DAPI
发现什么 FOXG1+ 占 53.86% ± 5.58%(n=3);VSX2+ 占 4.18% ± 1.04%(n=3);FOXG1 与 VSX2 不完全重叠,提示多结构发育
说明什么 OVB-organoids 处于"细胞增殖 + 多能性维持 → 端脑 + 视杯特化"的过渡阶段;这是标准 cerebral organoids 无法做到的——Cerebral 组几乎不表达 VSX2

关键逻辑衔接:确认 OVB 组同时含端脑与视杯 marker 后,作者追问——这种细胞组成差异是否在转录组层面也呈现?

核心发现 4:ImageJ 半定量证实 IF 结论

图4:半定量分析

图4:ImageJ 半定量分析两类类器官 marker 阳性比例。

维度 说明
做了什么 ImageJ 统计 Ki67+、SOX2+、Nestin+、PAX6+、MAP2+、FOXG1+、VSX2+ 细胞比例,两组对比,n=3
发现什么 Ki67/SOX2/Nestin/PAX6/MAP2 在两组间无显著差异(共同发育基础);FOXG1 与 VSX2 仅在 OVB 组显著阳性
说明什么 两组共享基础神经发育程序,但 OVB 组额外获得视杯命运——这是"同源异构"模型的定量证据

核心发现 5:转录组揭示 OVB vs Cerebral 的全局差异

图5:DEG Venn + 火山图 + 热图

图5:DEGs 分析。(A)Venn 图;(B)DEG 数量直方图;(C)火山图;(D)热图。

维度 说明
做了什么 bulk RNA-seq + DESeq2 鉴定 DEGs( log2FC ≥1,Q≤0.05)
发现什么 共表达 16,987 个基因;OVB 特异 338 个;Cerebral 特异 951 个;上调基因 1,625;下调基因 2,924
说明什么 OVB 组转录组已显著偏离"纯大脑"模式——这不仅是 marker 水平的差异,而是全基因组层面的命运重塑

核心发现 6:KEGG/GO 富集指向"突触功能上 / 免疫炎症代谢下"

图6:KEGG/GO 富集

图6:KEGG 与 GO 富集分析。(A)GO Cellular Component;(B)GO Molecular Function;(C)GO Biological Process;(D)KEGG pathway。

维度 说明
做了什么 clusterProfiler 富集分析,校正后 P<0.05
发现什么 上调通路:谷氨酸能突触、GABA 能突触、长期增强(LTP);下调通路:补体/凝血级联、胆固醇代谢、ECM-受体互作;GO MF:钙黏蛋白结合(cadherin binding)显著
说明什么 OVB 组的"突触功能获得"是 脑-眼协同发育 的分子证据;下调的免疫炎症通路可能反映 OVB 组减少了类器官培养中常见的"应激炎症反应"

核心发现 7:TEM 证实 OVB-organoids 形成功能性突触与髓鞘

图7A:TEM Day 10

图7B:TEM Day 20

图7A-B:TEM Day 10/20。Day 20 红箭头示突触小泡聚集、前/后突触膜致密清晰。

图7C:TEM Day 30

图7C:TEM Day 30。白箭头示髓鞘样结构。

维度 说明
做了什么 TEM 观察 Day 10 / 20 / 30 三时间点
发现什么 Day 10:基础细胞结构,无突触;Day 20:出现突触小泡聚集(红箭头)+ 前/后突触膜致密清晰;Day 30:髓鞘样结构(白箭头)出现
说明什么 OVB-organoids 不仅是 marker 阳性 + 转录组差异,还在超微结构层面达到功能性神经成熟——这是神经电生理评估(MEA)的形态学前提

核心发现 8:GSVA + RT-qPCR 证实视觉基因模块协同表达

图8:GSVA + 视觉基因

图8:(A)GSVA pathway enrichment;(B)vision-related pathway dotplot;(C)RT-qPCR 验证 6 个视觉相关基因。

维度 说明
做了什么 GSVA 通路富集 + RT-qPCR 验证 6 个视觉相关基因(CHRNB2、GLI3、SIX3、KCNA2、EXT1、TFAP2A)
发现什么 GSVA 显示 OVB 组在 AXON_GUIDANCE、NEUROTROPHIN_SIGNALING、视觉学习/行为、视神经发育/形态发生通路显著富集;CHRNB2 在 OVB 组表达 ~6.5 倍(vs Cerebral 组 1 倍,**** p<0.0001);其他 5 个基因两组无显著差异
说明什么 OVB-organoids 完整保留了"眼-脑"基因模块(CHRNB2 是烟碱型乙酰胆碱受体 β2 亚基,参与视网膜神经节细胞信号);这是电生理同步记录(MEA)评估的明确分子靶点

三、说明什么 💡

领域意义:本研究首次建立了"同源异构"的 OVB-organoid 模型,填补了"眼-脑协同发育"体外模型的空白。在此之前,研究者只能通过人工融合 assembloid 来重建多区域类器官,OVB-organoids 的"自发形成视泡"特征大幅降低了操作复杂度。重要的是,作者用 1,625/2,924 DEGs + 突触成熟 + CHRNB2 6.5 倍表达差异,提供了从细胞到分子到超微结构的多尺度证据链——这不是单一的"新模型"贡献,而是配套的"多尺度验证体系"。

临床转化价值:

作者坦诚的局限:① 长期培养技术挑战限制 OVB-organoids 进一步成熟(30 天后是否继续形成复杂结构未知);② 当前研究为早期阶段,更多表征(电生理、行为、移植)需要后续工作。


与我们的产品

产品 关联度 应用场景
HD-MEA 高密度微电极阵列系统 ⭐⭐⭐⭐⭐ OVB-organoids 形成功能性突触 + 髓鞘样结构 + CHRNB2 高表达 = 直接评估靶点。MEA 可长时程同步记录 OVB-organoids 中端脑 + 视杯区域的网络活动,建立"形态-电生理"闭环评估
3D 类器官 CorePlate 培养板 ⭐⭐⭐⭐ OVB-organoids 的 30 天长期培养 + 电生理同步记录需要 3D 兼容电极板;CorePlate 专为类器官悬浮培养设计,配套温控/CO₂ 维持
3D 生物打印系统 ⭐⭐⭐ OVB-organoids 的视泡结构是"自发形成"的;下一步可探索"打印诱导 + 类器官组装"以制备更复杂的眼-脑类器官结构(视网膜 + 视神经 + 皮层投射)
多通道电生理采集 + 光遗传模块 ⭐⭐⭐ CHRNB2 高表达提示 OVB-organoids 中存在功能性胆碱能突触,光遗传激活 CHRNB2+ 神经元可验证该通路的生理功能;MEA + 光遗传联合是验证标准方案

参考文献

  1. Yang J, Zhang X, Li S, Gao Z. Multiscale Comparative Analyses of OVB-Organoids and Cerebral Organoids. Cells. 2026;15(8):703. DOI: 10.3390/cells15080703
  2. Lancaster MA, Knoblich JA. Generation of cerebral organoids from human pluripotent stem cells. Nat Protoc. 2014;9(10):2329-40. DOI: 10.1038/nprot.2014.158
  3. Quadrato G, Nguyen T, Macosko EZ, et al. Cell diversity and network dynamics in photosensitive human brain organoids. Nature. 2017;545(7652):48-53. DOI: 10.1038/nature22047
  4. Sloan SA, Darmanis S, Huber N, et al. Human Astrocyte Maturation Captured in 3D Cerebral Organoids. Cell Rep. 2017;21(10):2959-2971. DOI: 10.1016/j.celrep.2017.11.025
  5. Eiraku M, Takata N, Ishibashi H, et al. Self-organizing optic-cup morphogenesis in three-dimensional culture. Nature. 2011;472(7341):51-6. DOI: 10.1038/nature09941

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Cells 重磅!中国军事医学科学院团队首次用 Vitamin A 诱导 hiPSC 生成同时含端脑 + 视泡的 OVB-organoids,Day 30 形成功能性突触 + 髓鞘样结构 + CHRNB2 6.5 倍表达差异,填补眼-脑协同发育体外模型空白 🧠👁


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