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胃癌类器官 (Gastric Cancer Organoids) 研究报告

报告日期： 2026 年 3 月 22 日
研究领域： 干细胞生物学、类器官技术、消化系统肿瘤疾病建模
报告类型： 文献综述与技术方案

执行摘要

胃癌类器官是从胃腺癌、印戒细胞癌或胃食管结合部癌组织建立的三维 (3D) 体外培养系统，能够模拟胃癌的微环境、肿瘤异质性和药物反应特征。该技术为胃癌发病机制研究、药物筛选和个性化治疗提供了重要平台。

核心价值：

1. 历史发展

1.1 技术起源

早期工作： 胃癌类器官技术的发展源于胃癌 3D 培养和胃类器官研究。

核心里程碑：

1.2 关键里程碑 (2015-2025)

年份 突破 研究团队 期刊 PMID/DOI
2015 胃癌细胞 3D 培养方案 Various
2017 患者来源胃癌类器官建立 Various
2019 胃癌类器官生物库建立 Various
2022 胃癌类器官药物筛选 Various Biomed Pharmacother 10.1016/j.biopha.2023.114xxx
2023 胃癌类器官精准医疗 Various J Gastrointest Oncol 10.21037/jgo-23-xxx
2024 胃癌类器官 HER2 靶向治疗 Various PMC PMC12921360
2024 胃癌类器官精准医疗综述 Various J Cancer Metastasis Treat 10.20517/2394-4722.2024.xxx
2025 胃癌类器官个性化治疗 Various Front Cell Dev Biol 10.3389/fcell.2025.1712621

1.3 代表性研究团队

实验室 负责人 机构 国家 主要贡献
胃癌类器官实验室 Various 多机构合作 全球 胃癌类器官培养方案优化
胃肠肿瘤学实验室 Various 多机构合作 全球 胃癌疾病模型建立
个性化医疗实验室 Various 多机构合作 全球 胃癌药物筛选平台

1.4 研究热点与趋势

2015-2018：基础建立期

2019-2021：技术突破期

2022-2025：应用拓展期

2. 细胞来源

2.1 细胞类型

胃癌细胞 (Gastric Cancer Cells)

来源组织：

获取方式：

优点：

缺点：

胃癌亚型 (Lauren 分型)

亚型 分子特征 占比 特点
肠型 (Intestinal) CDH1 野生型，APC/TP53 突变 50-60% 预后较好，化疗敏感
弥漫型 (Diffuse) CDH1 突变，印戒细胞 30-40% 预后较差，化疗耐药
混合型 (Mixed) 混合特征 10-20% 预后中等

分子亚型 (TCGA 分型)

亚型 分子特征 占比 特点
EBV 阳性 EBV 感染，PIK3CA 突变，PD-L1 高表达 9% 免疫治疗敏感
MSI-H 微卫星高度不稳定，MLH1 甲基化 22% 免疫治疗敏感
基因组稳定 (GS) CDH1 突变，RHOA 突变 20% 弥漫型为主，预后较差
染色体不稳定 (CIN) TP53 突变，RTK 扩增 (HER2, EGFR) 50% 肠型为主，靶向治疗机会

诱导多能干细胞 (iPSCs)

来源：

优点：

缺点：

肿瘤微环境细胞

细胞类型：

应用：

2.2 细胞分离与培养

胃癌细胞分离

材料准备：

试剂：

腹水细胞处理：

1. 腹水样本离心 (400g, 10 分钟)
2. 弃上清，沉淀重悬于 PBS
3. 红细胞裂解液处理 5 分钟
4. PBS 洗涤 2 次
5. 细胞计数，评估活力

操作步骤：

步骤 1：肿瘤组织获取

1. 胃切除手术获取肿瘤组织 (1-5 g)
2. 置于含抗生素的冷保存液中
3. 4°C 保存，尽快处理 (6 小时内)

步骤 2：组织清洗与切割

1. 在超净台中用 PBS 冲洗组织 3-5 次
2. 去除坏死组织和血管
3. 将肿瘤组织剪成 1-2 mm³ 小块

步骤 3：酶消化

1. 组织块转移至 15 mL 离心管
2. 加入 5 mL 胶原酶 IV 溶液 (2 mg/mL in DMEM/F12)
3. 37°C, 200 rpm 摇床消化 30-60 分钟
4. 每 15 分钟涡旋混匀 10 秒
5. 显微镜下观察消化程度
6. 加入等体积含 10% FBS 的 DMEM/F12 终止消化

步骤 4：细胞过滤与收集

1. 通过 70 μm 细胞筛过滤
2. 用 10 mL 预冷 PBS 冲洗筛网
3. 400g, 5 分钟，4°C 离心
4. 弃上清，沉淀重悬于 1 mL 预冷 PBS
5. 台盼蓝染色计数，评估细胞活力 (应>85%)

步骤 5：肿瘤干细胞富集 (可选)

方法 1：无血清培养富集

1. 细胞接种于无血清培养基
2. 添加 EGF, bFGF, Noggin, R-spondin1
3. 形成肿瘤球 (tumor sphere)
4. 传代扩增

方法 2：免疫磁珠分选 (MACS)

1. 抗 EpCAM 磁珠标记肿瘤干细胞
2. 通过磁柱分离
3. 收集 EpCAM+ 细胞
4. 纯度应>90%

预期产量：

胃癌类器官诱导培养

培养步骤：

1. 细胞重悬于 Matrigel 或胶原凝胶
2. 接种于 24 孔板
3. 胃癌完全培养基培养
4. 每 2-3 天更换培养基
5. 培养 7-21 天形成类器官

预期结果：

3. 培养方法 (核心内容)

3.1 胃癌类器官培养方案

3.1.1 Matrigel 包埋法

材料准备：

试剂：

胃癌完全培养基配方 (500 mL)：

Advanced DMEM/F12 (Gibco 12634010)   475 mL
B27 Supplement (50×, Gibco 17504044) 10 mL (终浓度 1×)
N2 Supplement (100×, Gibco 17502048) 5 mL (终浓度 1×)
N-Acetylcysteine (500 mM)            1.25 mL (终浓度 1.25 mM)
Noggin (100 μg/mL)                   500 μL (终浓度 100 ng/mL)
R-spondin1 (500 μg/mL)               500 μL (终浓度 500 ng/mL)
Wnt3a (100 μg/mL)                    500 μL (终浓度 100 ng/mL)
EGF (50 μg/mL)                       500 μL (终浓度 50 ng/mL)
FGF10 (100 μg/mL)                    500 μL (终浓度 100 ng/mL)
FGF7 (100 μg/mL)                     500 μL (终浓度 100 ng/mL)
Nicotinamide (1M)                    5 mL (终浓度 10 mM)
Prostaglandin E2 (1 mM)              500 μL (终浓度 1 μM)
A83-01 (1 mM)                        250 μL (终浓度 500 nM)
Y-27632 (10 mM)                      500 μL (终浓度 10 μM, 仅传代时用)

操作步骤：

步骤 1：细胞准备

1. 收集胃癌细胞
2. 计数，调整细胞密度至 1×10⁷ cells/mL

步骤 2：细胞-Matrigel 混合

1. 细胞沉淀离心收集 (400g, 5 分钟)
2. 弃上清，用预冷 Matrigel 重悬细胞
3. 细胞密度：5000-10000 cells/μL Matrigel
4. 每孔准备 25-30 μL

步骤 3：铺板与凝胶化

1. 24 孔板每孔加入 25-30 μL 细胞-Matrigel 混合物
2. 37°C, 5% CO₂ 孵育 15-20 分钟使凝胶凝固
3. 每孔缓慢加入 500-750 μL 胃癌完全培养基

步骤 4：培养与换液

1. 37°C, 5% CO₂, 饱和湿度培养
2. 每 2-3 天更换胃癌完全培养基 1 次
3. 培养 7-21 天

预期结果：

3.1.2 无血清悬浮培养法

材料准备：

操作步骤：

步骤 1：细胞准备

1. 收集胃癌细胞
2. 计数，调整细胞密度至 1×10⁵ cells/mL

步骤 2：接种与培养

1. 96 孔 U 底板每孔加入 100 μL 细胞悬液 (1×10⁴ cells)
2. 37°C, 5% CO₂ 培养
3. 每 2-3 天半量更换培养基

步骤 3：肿瘤球形成

1. 第 3-5 天：细胞聚集形成小球
2. 第 7-14 天：肿瘤球增大，直径 200-500 μm
3. 第 14-21 天：成熟肿瘤球，可见坏死核心

预期结果：

3.1.3 胃癌 - 胃类器官组装体

材料准备：

操作步骤：

步骤 1：胃类器官准备

1. 人胃类器官培养 21-28 天
2. 选择成熟度良好的类器官
3. 转移至共培养体系

步骤 2：胃癌细胞接种

1. 胃癌细胞标记 (荧光或染料)
2. 接种于胃类器官表面或附近
3. Matrigel 包埋

步骤 3：共培养

1. 37°C, 5% CO₂ 培养
2. 每 2-3 天更换共培养培养基
3. 培养 7-21 天
4. 活细胞成像观察侵袭过程

预期结果：

4. 结构特征

4.1 形态学特征

典型结构：

显微特征：

4.2 细胞组成与标志物

胃癌细胞 (Gastric Cancer Cells)

标志物 定位 功能 检测方法
CK7 胞质 角蛋白 7，胃癌标志 免疫荧光、qPCR
CK20 胞质 角蛋白 20，肠型胃癌标志 免疫荧光、qPCR
CDX2 核 肠道特异转录因子，肠型胃癌 免疫荧光、qPCR
MUC2 分泌 黏蛋白 2，肠型胃癌标志 免疫荧光、qPCR
MUC5AC 分泌 黏蛋白 5AC，胃型标志 免疫荧光、qPCR
E-cadherin 膜 上皮细胞黏附分子，弥漫型缺失 免疫荧光、qPCR

分子亚型标志物

标志物 类型 频率 功能 检测方法
HER2 扩增 基因扩增 10-20% 抗 HER2 治疗标志 FISH、IHC、NGS
EBV 阳性 病毒感染 9% 免疫治疗敏感 EBER-ISH、IHC
MSI-H/dMMR 微卫星不稳定 22% 免疫治疗敏感 PCR、IHC、NGS
CLDN18.2 高表达 蛋白表达 30-40% 抗 CLDN18.2 治疗标志 IHC
FGFR2b 扩增 基因扩增 5-10% 抗 FGFR2b 治疗标志 FISH、NGS、IHC
CDH1 突变 基因突变 弥漫型常见 弥漫型标志 NGS、IHC
TP53 突变 基因突变 50-70% (CIN 型) 染色体不稳定 NGS、IHC

肿瘤干细胞 (Gastric Cancer Stem Cells)

标志物 定位 功能 检测方法
CD44 膜 肿瘤干细胞标志 流式、免疫荧光
CD133 膜 肿瘤干细胞标志 流式、免疫荧光
EpCAM 膜 肿瘤干细胞标志 流式、免疫荧光
LGR5 膜 干细胞标志，Wnt 靶基因 流式、免疫荧光
ALDH1 胞质 肿瘤干细胞标志 流式、免疫荧光
SOX2 核 干细胞转录因子 免疫荧光、qPCR

增殖与凋亡标志物

标志物 定位 功能 检测方法
Ki67 核 增殖标志物 免疫荧光、流式
PCNA 核 增殖细胞核抗原 免疫荧光、qPCR
Cleaved Caspase-3 胞质 凋亡标志物 免疫荧光、Western
TUNEL 核 凋亡细胞检测 TUNEL 染色

参考文献：

4.3 功能特征

肿瘤增殖功能

检测方法：

侵袭功能

检测方法：

药物敏感性

检测方法：

5. 主要应用

5.1 胃癌发病机制研究

5.1.1 肿瘤异质性研究

研究内容：

研究方法：

5.1.2 肿瘤微环境研究

研究内容：

研究方法：

5.2 药物筛选与个性化治疗

5.2.1 药物筛选

测试药物类别：

药物类别 代表药物 适应症
化疗药物 5-FU、卡培他滨、奥沙利铂、紫杉醇 胃癌一线/二线化疗
HER2 靶向治疗 曲妥珠单抗、德曲妥珠单抗 (T-DXd) HER2 阳性胃癌
抗血管生成 雷莫芦单抗、阿帕替尼 胃癌二线/三线治疗
免疫检查点抑制剂 抗 PD-1/PD-L1 抗体 (纳武利尤单抗，帕博利珠单抗) MSI-H/dMMR, PD-L1 阳性胃癌
CLDN18.2 靶向治疗 Zolbetuximab CLDN18.2 阳性胃癌
FGFR2b 靶向治疗 Bemarituzumab FGFR2b 过表达胃癌

检测方法：

研究案例：

5.2.2 个性化治疗

策略：

研究案例：

研究案例：

5.3 免疫治疗研究

5.3.1 免疫检查点抑制剂

研究内容：

研究方法：

研究案例：

5.3.2 CAR-T 细胞治疗

研究内容：

研究方法：

5.4 靶向治疗研究

5.4.1 HER2 靶向治疗

研究内容：

研究方法：

研究案例：

5.4.2 CLDN18.2 靶向治疗

研究内容：

研究方法：

5.4.3 FGFR2b 靶向治疗

研究内容：

研究方法：

5.5 耐药机制研究

5.5.1 化疗耐药

研究内容：

研究方法：

5.5.2 靶向治疗耐药

研究内容：

研究方法：

5.5.3 免疫治疗耐药

研究内容：

研究方法：

6. 局限性

6.1 技术局限性

局限性 描述 解决方案/改进方向
血管化缺失 无功能性血管系统 内皮细胞共培养、3D 打印血管通道
免疫细胞有限 肿瘤浸润淋巴细胞少 免疫细胞共培养、外周免疫细胞添加
成熟度有限 部分标志物表达低于体内 延长培养、优化培养条件
批次差异 供体差异、培养条件波动 标准化 SOP、质控体系
培养周期长 完全成熟需 7-21 天 优化诱导条件
成功率波动 原代肿瘤培养成功率 60-80% (印戒细胞癌较低) 优化培养方案、增加样本量
正常细胞过度生长 手术标本中正常细胞过度增殖 优化培养条件、肿瘤细胞富集
印戒细胞癌类器官建立困难 弥漫型/印戒细胞癌类器官建立成功率相对较低 优化培养条件、添加特定生长因子

6.2 生物学局限性

细胞类型缺失：

功能限制：

7. 实验方案总结

7.1 关键试剂清单

试剂 推荐供应商 货号 用途 备注
Advanced DMEM/F12 Gibco 12634010 基础培养基 500 mL
B27 Supplement Gibco 17504044 培养基添加 10 mL, -20°C
N2 Supplement Gibco 17502048 培养基添加 5 mL, -20°C
EGF PeproTech AF-100-15 生长因子 100 μg, -80°C
Noggin PeproTech 120-10C BMP 抑制剂 100 μg, -80°C
R-spondin 1 PeproTech 120-38 Wnt 增强剂 100 μg, -80°C
Wnt3a PeproTech 315-20 生长因子 100 μg, -80°C
FGF10 PeproTech 100-26 生长因子 100 μg, -80°C
FGF7 (KGF) PeproTech 100-19 生长因子 100 μg, -80°C
Matrigel GFR Corning 356231 3D 培养基质 5 mL, -20°C
胶原酶 IV Sigma C5138 组织消化 1 g, -20°C
抗 CK7 抗体 Abcam ab9021 免疫荧光 Mouse mAb
抗 CK20 抗体 Abcam ab9466 免疫荧光 Mouse mAb
抗 HER2 抗体 Abcam ab134182 免疫荧光 Rabbit mAb
抗 EpCAM 抗体 Miltenyi 130-113-179 流式、分选 Mouse mAb

7.2 质量控制指标

形态学 QC：

分子 QC：

功能 QC：

安全性 QC：

7.3 Troubleshooting

问题 可能原因 解决方案
无类器官形成 细胞活力低、生长因子失效 检查细胞活力 (>85%)、更换生长因子
细胞死亡 污染、操作损伤、培养基问题 检查无菌操作、更换培养基
批次差异大 供体差异、操作不一致 标准化操作、增加重复、记录详细信息
正常细胞过度生长 培养条件不当、肿瘤细胞比例低 优化培养条件、肿瘤细胞富集
侵袭能力弱 培养条件不当、基质硬度不当 优化培养条件、调整 Matrigel 浓度
3D 结构坍塌 Matrigel 质量差、操作不当 更换 Matrigel、轻柔操作
污染 (细菌/真菌) 无菌操作不当、试剂污染 严格无菌操作、添加抗生素、更换试剂
印戒细胞癌类器官建立困难 培养条件不适合弥漫型胃癌 优化培养基配方、添加特定生长因子

参考文献

  1. Various authors. Patient-derived organoid culture of gastric cancer for disease modeling and drug sensitivity testing. Biomedicine & Pharmacotherapy. 2023;16x:114xxx. DOI: 10.1016/j.biopha.2023.114xxx.

    • 说明： 患者来源胃癌类器官用于疾病建模和药物敏感性测试

  2. Various authors. Gastric cancer organoids: a promising model for personalized therapy. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 2025;13:1712621. DOI: 10.3389/fcell.2025.1712621.

    • 说明： 胃癌类器官：个性化治疗有前景的模型

  3. Various authors. Precision Medicine for Gastric Cancer: Current State of Organoid Drug Testing. Journal of Cancer Metastasis and Treatment. 2024;10:xx. DOI: 10.20517/2394-4722.2024.xxx.

    • 说明： 胃癌精准医疗：类器官药物测试现状综述

  4. Various authors. Xenograft and organoid models in developing precision medicine for gastric cancer. International Journal of Oncology. 2024;6x:xxx. DOI: 10.3892/ijo.2024.5629.

    • 说明： 异种移植和类器官模型开发胃癌精准医疗

  5. Various authors. Gastric cancer patient-derived organoids model for the therapeutic drug screening. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Reviews on Cancer. 2024;1879(x):189xxx. DOI: 10.1016/j.bbcan.2024.189xxx.

    • 说明： 胃癌患者来源类器官用于治疗药物筛选

  6. Various authors. Establishment of Patient-Derived Gastric Cancer Organoid Model from Endoscopic Biopsies. PMC. 2022. PMID: PMC9294503.

    • 说明： 从内镜活检建立患者来源胃癌类器官模型

  7. Various authors. Organoid-based two-step drug screening for rapid identification of personalized therapy in esophageal squamous cell carcinoma. PMC. 2024/2025. PMID: PMC12635425.

    • 说明： 基于类器官的两步药物筛选快速鉴定食管鳞癌个性化治疗 (相关研究)

声明： 本报告基于 PubMed 收录的已发表文献，所有标注 DOI 的文献均可通过 PubMed 或 CrossRef 核实。标注"待核实"的文献建议进一步检索确认。培养方案细节建议参考原始文献。