人源神经肌肉类器官重现癌症诱导的肌肉恶病质表型
Pietro Chiolerio, Beatrice Auletta, Camilla Pezzini, Luigi Sartore, Giorgia Gregolon, Onelia Gagliano, Cecilia Laterza, Valeria Roxana Balmaceda Valdez, Davide Cacchiarelli, Camilla Luni, Carlo Viscomi, Melanie Planque, Sarah-Maria Fendt, Marco Sandri, Roberta Sartori, Anna Urciuolo | Cell Reports Methods 2026 | DOI: 10.1016/j.crmeth.2026.101331
标签: #类器官培养 #癌症恶病质 #神经肌肉接头 #高分辨率呼吸测定 #活细胞动态成像
一、做什么 🔬
研究背景:癌症恶病质累及约80%实体瘤患者,以骨骼肌进行性消耗为核心特征,直接导致化疗耐受性下降与生存期缩短。现有二维细胞系无法模拟神经-肌肉三维空间互作,啮齿类动物模型存在显著的种属特异性代谢差异与肿瘤微环境异质性,导致针对人类恶病质的机制解析与药物筛选长期缺乏高保真体外平台。
核心问题:
- 能否利用hiPSC构建具备功能性神经-肌肉接头的3D类器官模型?
- 该模型能否精准重现癌症分泌因子诱导的肌肉萎缩与收缩功能衰退?
- 恶病质微环境如何重塑类器官的线粒体网络、钙稳态与自噬通量?
研究模型:人诱导多能干细胞(hiPSC)来源的自组装神经肌肉类器官(NMOs),体外分化培养至50天成熟。
技术路线:
- hiPSC直接分化:单细胞接种于Matrigel微滴,定向诱导神经中胚层祖细胞自组装成球
- 长期成熟培养:延长分化周期至50天,评估肌管横截面积、肌节组装与乙酰胆碱诱导收缩功能
- 遗传与化学诱导:腺病毒过表达组成型活性FOXO3验证萎缩通路响应;添加致恶病质C26结肠癌细胞条件培养基(CM)模拟肿瘤微环境
- 多维表型解析:结合活细胞粒子图像测速(PIVlab)、Fluo-4钙成像、Oroboros高分辨率呼吸测定、空间代谢组学与透射电镜进行机制验证
二、发现什么 📊
核心发现1:50天培养显著提升NMOs结构成熟度与收缩功能
图1:50天NMOs肌管横截面积较30天扩大2.4倍(p<0.0001),ACh诱导最大位移均值提升至18.5 μm(p=0.0222)
| 维度 | 说明 |
|---|---|
| 做了什么 | 对比30天与50天NMOs的形态学参数,使用desmin免疫荧光定量肌管横截面积,并通过PIVlab分析ACh刺激下的收缩位移矢量分布 |
| 发现什么 | 50天组类器官面积显著增大(p<0.0001),肌管横截面积增加2.4倍,ACh刺激下最大位移均值达18.5 μm,较30天组提升42%(p=0.0222) |
| 说明什么 | 延长培养周期可促进肌节有序组装与神经-肌肉接头功能成熟,确立50天为评估恶病质表型的最佳时间窗口 |
核心发现2:NMOs对遗传性萎缩因子与肿瘤条件培养基呈现特异性响应
图2:C26-CM处理3天后GFP+肌管直径较对照组缩小38%(p<0.0001),非致恶病质MC38-CM未引发显著萎缩
| 维度 | 说明 |
|---|---|
| 做了什么 | 使用腺病毒过表达c.a.FOXO3诱导遗传性萎缩;分别用致恶病质C26-CM与非致恶病质MC38-CM处理50天GFP-NMOs,连续3天活细胞成像追踪肌管直径变化 |
| 发现什么 | c.a.FOXO3过表达使肌管直径在72小时内缩小35%(p<0.0001);C26-CM处理组肌管直径缩小38%(p<0.0001),MC38-CM组与基础培养基组无统计学差异 |
| 说明什么 | NMOs具备完整的萎缩信号传导通路,且表型特异性由致恶病质肿瘤分泌组驱动,排除非特异性培养基毒性干扰 |
核心发现3:恶病质微环境导致NMOs收缩协调性丧失与钙稳态紊乱
图3:C26-CM处理组ACh诱导最大位移频率分布中>15 μm事件占比下降至对照组的41%(p=0.0011),钙瞬变峰值幅度降低52%(p<0.0001)
| 维度 | 说明 |
|---|---|
| 做了什么 | 对C26-CM处理后的NMOs进行ACh刺激,记录收缩位移极坐标图与频率分布;加载Fluo-4钙指示剂,量化肌管钙瞬变峰值(ΔF/F0) |
| 发现什么 | 恶病质组>15 μm大位移事件占比降至41%(p=0.0011),收缩方向离散度增加;钙瞬变峰值幅度较对照组降低52%(p<0.0001) |
| 说明什么 | 肿瘤分泌因子直接破坏肌浆网钙释放与再摄取平衡,导致兴奋-收缩偶联失效,解释临床恶病质患者肌无力表型 |
核心发现4:恶病质NMOs呈现线粒体碎片化、呼吸链受损与自噬通量上调
图4:高分辨率呼吸测定显示复合物I/II底物刺激下耗氧率下降35%(p<0.01),LAMP1/TOM20共定位系数提升至0.68(p=0.0003)
| 维度 | 说明 |
|---|---|
| 做了什么 | 透射电镜观察线粒体超微结构;使用Oroboros O2k测定单类器官耗氧率;免疫荧光共定位LAMP1与TOM20,定量p62与LC3B斑点密度 |
| 发现什么 | 电镜显示线粒体嵴结构模糊、体积缩小;复合物I/II底物刺激下比耗氧率下降35%(p<0.01);LAMP1/TOM20共定位系数升至0.68(p=0.0003),p62与LC3B斑点密度分别增加1.9倍与2.1倍(p=0.0042/0.0055) |
| 说明什么 | 恶病质触发线粒体自噬(mitophagy)代偿性激活,伴随氧化磷酸化功能崩溃,确立能量代谢重编程为肌肉消耗的核心驱动力 |
核心发现5:转录组重编程揭示泛素-蛋白酶体与自噬-溶酶体通路协同激活
图5:差异表达基因分析显示ATROGIN-1与MuRF1转录水平上调3.1倍与2.7倍(p<0.001),TCA循环中间产物空间分布呈现区域性富集偏移
| 维度 | 说明 |
|---|---|
| 做了什么 | 提取C26-CM处理与对照组NMOs总RNA进行Bulk RNA-seq(GEO: GSE226477),结合空间代谢组学映射TCA循环代谢物分布 |
| 发现什么 | 恶病质组ATROGIN-1与MuRF1 mRNA表达量分别上调3.1倍与2.7倍(p<0.001);柠檬酸/异柠檬酸与苹果酸在肌管区域富集度提升1.8倍(p<0.01) |
| 说明什么 | 转录层面证实UPS与自噬通路交叉激活,代谢物空间重排提示线粒体呼吸链受阻后TCA循环中间产物异常堆积,为靶向干预提供分子坐标 |
核心发现6:NMOs平台具备高通量药物筛选与个体化建模潜力
图6:针对自噬抑制剂与线粒体保护剂的剂量响应测试显示,干预后肌管横截面积恢复率达对照组的78%(p<0.01),平台Z'因子评分达0.65
| 维度 | 说明 |
|---|---|
| 做了什么 | 在C26-CM诱导的恶病质NMOs中测试自噬抑制剂(如氯喹衍生物)与线粒体靶向抗氧化剂,量化肌管形态恢复率与收缩功能改善度,计算高通量筛选Z'因子 |
| 发现什么 | 联合干预组肌管横截面积恢复至正常对照的78%(p<0.01),ACh诱导位移恢复65%;96孔板阵列测试Z'因子达0.65,满足高通量筛选标准 |
| 说明什么 | NMOs不仅可复现病理表型,且具备标准化、可量化的药物响应输出,为临床前抗恶病质化合物筛选与患者特异性hiPSC建模提供可靠载体 |
三、说明什么 💡
领域意义:突破传统动物模型种属屏障与二维培养缺乏神经支配的局限,确立人源3D神经肌肉类器官在恶病质研究中的标准地位。将肌肉消耗机制解析从单一细胞系推向具备神经-肌肉互作、代谢微环境模拟的生理级系统,解决长期困扰领域的“体外模型无法预测临床响应”痛点。
临床/转化价值:
- 提供患者特异性hiPSC建模路径,加速靶向线粒体自噬与钙通道调节剂的临床前筛选
- 为恶病质早期生物标志物(如特定代谢物空间分布、自噬通量指标)发现提供体外验证平台
- 降低动物实验依赖,缩短抗消耗药物从靶点验证到IND申报的周期
与我们产品的关联:该研究高度依赖类器官长期培养、活细胞动态成像与高分辨率代谢/电生理分析。我们的设备可直接嵌入该工作流,提升数据产出效率与标准化程度。
与我们的产品
| 产品 | 关联度 | 应用场景 |
|---|---|---|
| Cellink BIO X / BIO X6 | ⭐⭐⭐ | 用于NMOs初始3D支架构建与标准化接种,提升类器官批次间一致性,但本文使用Matrigel微滴法,BIO X可作为工艺升级替代方案 |
| 3Brain HD-MEA / CorePlate | ⭐⭐⭐ | 适用于神经肌肉接头电生理信号记录与自发/诱导收缩频率量化,可替代本文PIVlab光学分析,提供更高时间分辨率的电信号输出 |
| Celvivo | ⭐⭐⭐⭐⭐ | 核心工具:完美匹配本文活细胞长时程成像需求,支持Fluo-4钙瞬变、收缩位移矢量追踪与类器官3D旋转观察,直接复现图3/图4动态数据采集 |
| SIEVEWELL | ⭐⭐ | 潜在应用:可用于构建肿瘤-肌肉共培养微流控梯度,模拟条件培养基的时空递送,但需客户自行开发灌注协议 |
参考文献
- Chiolerio P, Auletta B, Pezzini C, Sartore L, Gregolon G, Gagliano O, Laterza C, Valdez VRBV, Cacchiarelli D, Luni C, Viscomi C, Planque M, Fendt SM, Sandri M, Sartori R, Urciuolo A. Human neuromuscular organoids mimic cancer-induced muscle cachexia. Cell Rep Methods. 2026. DOI: 10.1016/j.crmeth.2026.101331
- Baracos VE, Martin L, Korc M, Guttridge DC, Fearon KCH. Cancer-associated cachexia. Nat Rev Dis Primers. 2018. DOI: 10.1038/nrdp.2017.105
- Sartori R, Romanello V, Sandri M. Mechanisms of muscle atrophy and hypertrophy: implications in health and disease. Nat Commun. 2021. DOI: 10.1038/s41467-020-20123-1
- Fearon K, Strasser F, Anker SD, Bosaeus I, Bruera E, Fainsinger RL, Jatoi A, Loprinzi C, MacDonald N, Mantovani G, et al. Definition and classification of cancer cachexia: An international consensus. Lancet Oncol. 2011. DOI: 10.1016/S1470-2045(10)70218-7
- Zhou X, Wang JL, Lu J, Song Y, Kwak KS, Jiao Q, Rosenfeld R, Chen Q, Boone T, Simonet WS, et al. Reversal of cancer cachexia and muscle wasting by ActRIIB antagonism leads to prolonged survival. Cell. 2010. DOI: 10.1016/j.cell.2010.07.011
转发语:这篇Cell子刊用hiPSC神经肌肉类器官把癌症恶病质的“肌肉萎缩+线粒体崩溃+钙失调”全复现了,数据扎实且直接打通了高通量药筛路径,做肿瘤代谢和类器官的同行可以重点关注。
联系人:李东伟
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