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中内胚层共分化驱动肺肠类器官器官特异性血管化

Yifei Miao, Nicole M. Pek, Cheng Tan, Cheng Jiang, Zhiyun Yu, Kentaro Iwasawa, Min Shi, Daniel O. Kechele, Nambirajan Sundaram, Victor Pastrana-Gomez, Debora I. Sinner, Xingchen Liu, Ko Chih Lin, Cheng-Lun Na, Keishi Kishimoto, Min-Chi Yang, Sushila Maharjan, Jason Tchieu, Jeffrey A. Whitsett, Yu Shrike Zhang, Kyle W. McCracken, Robbert J. Rottier, Darrell N. Kotton, Michael A. Helmrath, James M. Wells, Takanori Takebe, Aaron M. Zorn, Ya-Wen Chen, Minzhe Guo, Mingxia Gu | Cell 2025 | DOI: 10.1016/j.cell.2025.05.041

标签: #类器官 #血管化 #中内胚层共分化 #肺肠发育 #FOXF1疾病模型 #3D生物支架


头部信息

项目 内容
研究机构 辛辛那提儿童医院医学中心(CCHMC)、哈佛大学医学院、加州大学洛杉矶分校(UCLA)、西奈山伊坎医学院等
研究类型 Research Article
关键技术 iPSC多谱系共分化、单细胞转录组测序(scRNA-seq)、空间转录组(Slide-seq)、3D水凝胶支架
核心发现 通过BMP信号精细调控中内胚层在单一微球内共分化,构建出具备器官特异性血管与间质的肺/肠类器官,并揭示微环境配体驱动内皮器官特异性及FOXF1突变致病的细胞互作机制。

一、做什么 🔬

1. 他们想解决什么具体问题

传统内胚层来源的类器官(肺、肠)长期缺乏血管与间质组分,导致无法模拟器官特异性血管床的发育过程,更难以解析内皮-上皮-间质之间的三维空间互作。现有拼装式血管化策略(如外源添加HUVEC)生成的内皮细胞缺乏器官特异性,且结构松散,严重限制了类器官在发育生物学与遗传病建模中的生理相关性。

2. 他们怎么设计的实验

要素 说明
模型体系 人多能干细胞(iPSC)衍生的3D拟胚体(EB),同步诱导中胚层与内胚层共分化
关键技术 BMP4暴露时长调控(0-1天 vs 0-3天)设定前后轴命运;VEGFA+ANG1促进血管成熟;scRNA-seq+空间转录组解析配体-受体网络;GelMA/HAMA 3D支架重建肺泡结构
对照组 传统单一内胚层分化类器官(cLPO/cHIO)、原代人肺微血管内皮(HPMEC)、人脐静脉内皮(HUVEC)、野生型iPSC对照

3. 为什么值得读

该研究突破了过去“先分化后拼装”的技术瓶颈,证明在单一微球内通过发育时序信号即可自发形成高保真多谱系结构。方法学上大幅简化了培养体系,机制上首次绘制了驱动内皮器官特异性的微环境配体图谱,为复杂器官发育与罕见病建模提供了可直接落地的体外平台。


二、发现什么 📊

故事线概览

Figure 1-2 建立中内胚层共分化体系,证实内皮细胞在特定微环境配体驱动下获得器官特异性转录特征与屏障功能;Figure 3-4 揭示间质细胞的前后轴模式化规律,并通过小鼠肾包膜移植验证血管网络与宿主循环的整合能力;Figure 5-6 证明血管/间质微环境显著促进上皮成熟与细胞多样性,并在工程支架上成功重建肺泡气-血屏障雏形;Figure 7 将该多谱系系统应用于FOXF1突变导致的肺泡毛细血管发育不良(ACDMPV)建模,解析原发性血管缺陷与继发性上皮损伤的因果链条。

Figure 1~2:BMP时序调控共分化比例与内皮器官特异性确立

图1:BMP信号暴露时长决定前后轴命运及血管化类器官构建流程

维度 说明
做了什么 在iPSC拟胚体分化前3天设置不同BMP4处理窗口(0-1天 vs 0-3天),第3-7天添加VEGFA/ANG1,第7-21天维持肺/肠谱系诱导。通过全胚染色、流式与scRNA-seq定量血管与上皮比例。
发现什么 BMP 0-1天处理使前肠/肺上皮(NKX2.1+/CDX2−)占比提升,0-3天处理使后肠上皮(CDX2+/SOX2−)占比提升。第21天血管化肺类器官(vHLPO)内皮占比达7%,血管化肠类器官(vHIO)达9%,传统类器官为0%。
说明什么 早期BMP信号强度与时长直接预设了内胚层前后轴命运,且内源性形态发生素足以维持血管网络,无需外源持续添加促血管因子,大幅简化了多谱系分化流程。

图2:内皮细胞获得器官特异性转录特征与屏障功能

维度 说明
做了什么 对第21天vHLPO、vHIO、vHCO进行scRNA-seq,与人类胎儿肺/肠图谱比对。分离内皮细胞进行跨内皮电阻(TEER)测试,利用CellChat分析配体-受体(L-R)网络,并在通用血管类器官中回补候选配体验证。
发现什么 肺内皮特异性表达HPGD/APCDD1,肠内皮表达STAB1/MTUS1。肺内皮TEER值显著高于肠内皮(p<0.01),接近原代HPMEC。鉴定出SEMA3E、FGF9(肺)与IGF2、SEMA4C(肠)为关键器官特异性诱导配体。
说明什么 内皮细胞的器官特异性并非固有,而是由邻近上皮/间质分泌的特定配体网络动态塑造。肺内皮的高屏障特性与气体交换生理需求高度吻合,证实该体外系统能精准重现体内功能分化。

图间逻辑:为什么从 Figure 1~2 走到 Figure 3~4

因为Figure 1-2证实了内皮细胞能在共分化体系中获得器官特异性,但内皮发育高度依赖间质微环境,且体外静态培养无法验证血管的灌注功能。所以必须通过Figure 3解析间质细胞的前后轴模式化特征,并通过Figure 4的体内移植实验验证该血管网络是否具备与宿主循环整合的真实生理能力。

Figure 3~4:间质前后轴模式化与体内血管网络整合

图3:血管化类器官间质重现胚胎前后轴空间特征

维度 说明
做了什么 对第7天vAFG/vMHG及第21天类器官进行scRNA-seq,与E8.75小鼠原肠图谱进行伪批量相似性分析。利用smFISH与qPCR验证TBX4(肺)与IGFBP7(肠)等间质标志物。
发现什么 第7天vAFG/vMHG间质已呈现清晰的前后轴身份,与小鼠胚胎高度保守。第21天vHLPO间质高表达TBX4,vHIO高表达IGFBP7,传统类器官中肠上皮污染率高达19.7%,而vAFG中降至0%。
说明什么 中胚层共分化不仅生成血管,还同步构建了具备器官空间记忆的间质基质。间质-内皮-上皮的同步模式化是维持类器官结构纯度与减少异位分化的核心机制。

图4:移植后血管网络与宿主循环整合及空间互作图谱

维度 说明
做了什么 将vHLPO/vHIO移植至免疫缺陷小鼠肾包膜下培养3个月。使用人/鼠特异性PECAM-1探针与Ku80抗体追踪血管来源。利用Slide-seq空间转录组绘制tvHLuO中L-R对的空间分布。
发现什么 移植后类器官形成分支状结构,皮下毛细血管床充满小鼠红细胞。人源血管占比在紧邻上皮区域达85%以上,与宿主血管形成吻合结构。116个驱动胎儿肺内皮发育的L-R对中,41个在tvHLuO中被空间捕获。
说明什么 体外生成的血管网络具备真实的灌注与宿主整合能力,且保留了器官特异性。空间转录组证实了关键旁分泌信号在三维空间中的精确定位,为理解血管成熟提供了原位证据。

图间逻辑:为什么从 Figure 3~4 走到 Figure 5~6

因为Figure 3-4证明了血管与间质在体内能成功整合并维持空间互作网络,但血管化对上皮发育的具体贡献尚未量化。所以Figure 5-6聚焦于微环境如何反向驱动上皮成熟,并尝试在体外工程支架上重建肺泡气-血界面,验证该系统的结构可塑性。

Figure 5~6:微环境驱动上皮成熟与肺泡支架重建

图5:血管/间质支持降低上皮损伤并促进成熟细胞亚群出现

维度 说明
做了什么 对比vHLPO与传统cLPO上皮转录组,进行GO通路富集与差异基因分析。利用smFISH与蛋白质组学检测分泌液成分。通过空间转录组验证WNT5A-ANTXR1、FGF18-FGFR1等互作对。
发现什么 vHLPO上皮中DNA损伤/衰老相关基因KRT19/CLDN4表达下降,肺形态发生通路显著富集。移植后tvHLuO中首次检测到人类呼吸道分泌(RAS)细胞(SCGB3A2+/SCGB1A1+)及表面活性蛋白肽段。
说明什么 血管与间质提供的旁分泌信号有效抑制了上皮细胞的应激与衰老状态,推动其向终末成熟分化。RAS细胞的出现证明该模型能重现小鼠缺乏的人类特有肺泡结构。

图6:GelMA/HAMA支架上重建肺泡气-血屏障雏形

维度 说明
做了什么 将解离的vHLPO细胞重铺于气液界面(ALI)及优化后的GelMA/HAMA多孔水凝胶支架。通过免疫荧光与透射电镜(TEM)观察细胞空间排布与超微结构。
发现什么 vHLPO细胞在支架上自主组装成肺泡囊样结构,内皮沿水凝胶表面排列并包裹上皮芽。TEM显示早期AT1(扁平化)与AT2(含板层小体)细胞与aCap/gCap内皮紧密相邻,形成物理贴合。
说明什么 多谱系细胞在仿生支架上能自发重建肺泡几何构型与气-血屏障雏形。该体外重建策略为研究肺泡发育、纤维化及药物渗透提供了高可控的物理模型。

图间逻辑:为什么从 Figure 5~6 走到 Figure 7

因为Figure 5-6已完整验证该多谱系系统在正常发育与结构重建中的高保真度,具备模拟复杂病理互作的基础。所以Figure 7将系统转向临床转化,利用FOXF1突变患者iPSC构建疾病模型,解析传统单一上皮类器官无法捕捉的血管-间质-上皮级联缺陷。

Figure 7:FOXF1突变导致血管缺陷与继发性上皮损伤

图7:ACDMPV患者iPSC模型揭示内皮-间质缺陷引发上皮异常

维度 说明
做了什么 使用3株FOXF1突变/缺失ACD患者iPSC与3株健康对照生成vHLuO/vHIO。定量毛细血管密度、aCap/gCap比例及上皮分化标志物。对比传统类器官与突变小鼠模型表型。
发现什么 ACD vHLuO中毛细血管形成显著减少,aCap/gCap群体下降。尽管FOXF1不在上皮表达,但突变体中远端肺上皮(SOX9+/NKX2-1+)减少,AT1分化(HOPX+)受损,CLDN4+损伤中间态细胞异常积累。
说明什么 FOXF1突变首先破坏内皮与间质发育,通过旁分泌信号断裂引发非自主性上皮分化障碍。该模型完整重现了人类ACD病理特征,填补了动物模型与传统类器官的机制空白。

三、说明什么 💡

1. 这个结论改变了什么

2. 还有什么没解决

3. 与我们的产品

产品 关联度 具体应用场景
3Brain MEA ⭐⭐⭐ 配套使用:可替代静态TEER测量,实时记录血管化类器官内皮屏障电阻的动态变化及药物干预下的电生理响应。
Cellink 3D生物打印机 ⭐⭐⭐⭐⭐ 核心工具:直接用于Fig 6的GelMA/HAMA肺泡支架打印。可精确控制孔隙率、血管通道拓扑结构及多细胞空间沉积,加速气-血屏障体外重建。
Celvivo ⭐⭐⭐ 配套使用:适用于类器官长期无血清培养与活细胞成像,支持移植前高通量筛选与血管网络动态追踪。
SIEVEWELL ⭐⭐ 潜在应用:可用于Fig 2中配体库的高通量筛选或药物毒性测试,但需客户自行建立多谱系类器官的自动化接种流程。

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参考文献

  1. Miao Y, Pek NM, Tan C, et al. Co-development of mesoderm and endoderm enables organotypic vascularization in lung and gut organoids. Cell. 2025. DOI: 10.1016/j.cell.2025.05.041
  2. Yu Y, et al. A human fetal lung cell atlas reveals key developmental trajectories. Nature. 2022. DOI: 10.1038/s41586-022-05245-8
  3. Takebe T, Sekine K, Enomura M, et al. Vascularized and functional human liver from an iPSC-derived organ bud transplant. Nature. 2013. DOI: 10.1038/nature12271
  4. McCracken KW, Catá EM, Crawford CM, et al. Modelling human development and disease in pluripotent stem-cell-derived gastric organoids. Nature. 2014. DOI: 10.1038/nature13863

转发语:Cell最新发文,用BMP时序调控实现中内胚层共分化,成功构建带器官特异性血管的肺/肠类器官,并完整复现FOXF1突变导致的血管-间质-上皮级联病变。多谱系共培养+3D支架重建肺泡气-血屏障,为发育机制与罕见病建模提供高保真平台。

联系人:李东伟
📞 18045130660 🌐 https://www.biokingdom.top

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