Biokingdom

基于3D生物打印构建具备功能性连接的人源神经组织

Yuanwei Yan, Xueyan Li, Yu Gao, Sakthikumar Mathivanan, Linghai Kong, Yunlong Tao, Yi Dong, Xiang Li, Anita Bhattacharyya, Xinyu Zhao, Su-Chun Zhang | Cell Stem Cell 2024 | DOI: 10.1016/j.stem.2023.12.009
标签: #3D生物打印 #人源神经组织 #神经环路 #星形胶质细胞互作 #亚历山大病模型 #纤维蛋白水凝胶


一、做什么 🔬

研究背景:传统动物模型无法精准复现人脑高阶信息处理,现有类器官或垂直堆叠打印技术存在细胞分布不均、基质过硬抑制突触延伸、内部缺氧坏死等痛点。缺乏可动态评估神经环路功能、细胞比例可控的人源活体组织模型。

核心问题:

研究模型:人胚胎干细胞(hESC)及患者来源诱导多能干细胞(iPSC)分化的皮层谷氨酸能神经元、GABA能中间神经元、纹状体神经元前体细胞与星形胶质细胞前体细胞。

技术路线:


二、发现什么 📊

核心发现1:优化纤维蛋白生物墨水与水平打印策略实现高存活率组织构建

图1:2.5 mg/mL纤维蛋白原与0.5 U凝血酶组合下,细胞存活率维持在92%以上,凝胶化时间控制在120秒内,50 μm单层结构稳定成型。

图1:2.5 mg/mL纤维蛋白原与0.5 U凝血酶组合下,细胞存活率维持在92%以上,凝胶化时间控制在120秒内,50 μm单层结构稳定成型。

维度 说明
做了什么 系统测试不同浓度纤维蛋白原(1.25-5 mg/mL)与凝血酶(0.5-2 U)组合,测定凝胶化时间与hPSC来源皮层神经元前体细胞存活率,对比垂直堆叠与水平并列沉积的结构稳定性。
发现什么 凝血酶浓度>1 U时细胞存活率降至65%以下;2.5 mg/mL纤维蛋白原+0.5 U凝血酶组合凝胶化时间为118±12秒,打印后24小时细胞存活率达92.4±3.1%,50 μm薄层结构在常规培养下维持180天无塌陷。
说明什么 软性纤维蛋白基质配合水平条带沉积策略,彻底规避了硬质支架对神经突生长的物理阻碍与厚层组织的缺氧坏死,为后续功能性突触形成提供结构基础。

核心发现2:打印神经元在2-4周内完成定向分化与突触成熟

图2:打印后第21天,MAP2阳性神经元突起延伸长度达350±45 μm,SYN1突触前蛋白斑点密度达到65±8个/100 μm。

图2:打印后第21天,MAP2阳性神经元突起延伸长度达350±45 μm,SYN1突触前蛋白斑点密度达到65±8个/100 μm。

维度 说明
做了什么 对打印组织进行连续活细胞成像与免疫荧光染色,定量分析MAP2(树突)、Tuj1(轴突)及SYN1(突触前)的表达动态,记录自发突触电流频率。
发现什么 打印后第14天突起长度达180±30 μm,第21天延伸至350±45 μm;SYN1斑点密度从第7天的12±3个/100 μm跃升至第21天的65±8个/100 μm(p<0.001);第28天记录到稳定的自发性兴奋性突触后电流(sEPSC),频率为1.8±0.4 Hz。
说明什么 水平打印的软性微环境允许神经突自由延伸与交叉,2-4周内即可跨越传统类器官3-6个月的成熟周期,实现快速且同步的突触网络组装。

核心发现3:皮层-纹状体组织条带间建立定向轴突投射与功能性突触连接

图3:光遗传学激活皮层神经元后,纹状体神经元诱发电位(EPSC)频率从基线0.8 Hz跃升至3.2 Hz(p<0.01),响应细胞比例达78%。

图3:光遗传学激活皮层神经元后,纹状体神经元诱发电位(EPSC)频率从基线0.8 Hz跃升至3.2 Hz(p<0.01),响应细胞比例达78%。

维度 说明
做了什么 将ChR2标记的皮层神经元前体与mCherry标记的纹状体神经元前体按1:1比例水平并列打印,间隔距离设定为200 μm,采用全细胞膜片钳结合470 nm蓝光刺激记录跨条带突触传递。
发现什么 打印后第21天,皮层轴突单向投射至纹状体条带;蓝光刺激(10 ms脉冲)诱发纹状体神经元EPSC频率从基线0.8±0.2 Hz升至3.2±0.5 Hz(p<0.01),潜伏期稳定在12±3 ms,78%的纹状体神经元呈现光响应。
说明什么 打印平台可精确控制不同脑区神经元的空间排布与距离,成功复现皮层-纹状体环路的定向投射特性,证明体外构建的异质组织具备真实的跨区信息传递能力。

核心发现4:星形胶质细胞成熟并与神经元形成功能性代谢偶联网络

图4:神经元兴奋刺激下,共培养星形胶质细胞GCaMP6钙信号ΔF/F峰值达1.45±0.21,iGluSnFR谷氨酸摄取信号在刺激后30秒内恢复至基线水平。

图4:神经元兴奋刺激下,共培养星形胶质细胞GCaMP6钙信号ΔF/F峰值达1.45±0.21,iGluSnFR谷氨酸摄取信号在刺激后30秒内恢复至基线水平。

维度 说明
做了什么 将感染GCaMP6或iGluSnFR慢病毒的星形胶质细胞前体与健康神经元前体共打印,使用高浓度KCl(50 mM)局部刺激神经元,同步记录胶质细胞钙瞬变与突触间隙谷氨酸浓度变化。
发现什么 KCl刺激触发神经元放电后,邻近星形胶质细胞GCaMP6信号ΔF/F峰值达1.45±0.21;iGluSnFR荧光信号在刺激后15秒内上升0.18±0.04,随后在30±5秒内被完全清除并恢复至基线。
说明什么 打印的星形胶质细胞在2-4周内发育出成熟突起,并建立完整的“神经元兴奋-胶质细胞钙响应-谷氨酸重摄取”代谢偶联环路,验证了平台在解析神经-胶质互作中的可靠性。

核心发现5:亚历山大病(AxD)模型重现GFAP异常聚集与突触密度下降

图5:AxD患者来源星形胶质细胞在打印后60天呈现典型GFAP纤维聚集,SYN1突触密度降至32±5个/100 μm,较等基因对照下降58%(p<0.0001)。

图5:AxD患者来源星形胶质细胞在打印后60天呈现典型GFAP纤维聚集,SYN1突触密度降至32±5个/100 μm,较等基因对照下降58%(p<0.0001)。

维度 说明
做了什么 使用携带GFAP R236H突变的AxD患者iPSC分化星形胶质细胞,与健康神经元共打印,于第30天和第60天进行GLT-1、GFAP及SYN1多重免疫荧光定量分析。
发现什么 打印后60天,AxD组星形胶质细胞内出现显著GFAP纤维团块聚集;GLT-1谷氨酸转运体表达量较对照下降45%(p<0.01);SYN1突触密度从对照组的78±6个/100 μm降至32±5个/100 μm(p<0.0001)。
说明什么 打印组织精准复现了AxD病理特征,证明突变型星形胶质细胞的GLT-1功能缺失直接导致突触微环境紊乱与突触结构退化,为胶质细胞病变机制提供可视化证据。

核心发现6:AxD病理星形胶质细胞导致神经元兴奋性谷氨酸清除能力显著受损

图6:高钾刺激后,AxD组织iGluSnFR总振幅(ΔF/F)在2周和4周时分别仅为对照组的42%和38%(p<0.05),钙信号峰值降低至0.65±0.12。

图6:高钾刺激后,AxD组织iGluSnFR总振幅(ΔF/F)在2周和4周时分别仅为对照组的42%和38%(p<0.05),钙信号峰值降低至0.65±0.12。

维度 说明
做了什么 对AxD模型组织与等基因对照组织进行KCl刺激,连续4周记录iGluSnFR谷氨酸探针动态响应曲线与GCaMP6钙成像振幅,计算总信号积分面积。
发现什么 刺激后AxD组iGluSnFR信号清除延迟,2周时总振幅(ΔF/F)为0.06±0.01(对照0.15±0.02),4周时降至0.05±0.01(对照0.13±0.02),清除效率仅为对照的38%-42%(p<0.05);GCaMP6钙信号峰值同步降至0.65±0.12(对照1.10±0.15)。
说明什么 AxD星形胶质细胞的谷氨酸摄取动力学发生实质性障碍,导致突触间隙兴奋性递质堆积与钙信号传导衰减,该表型可直接作为高通量药物筛选的定量终点。

三、说明什么 💡

领域意义:该研究将3D生物打印从“结构成型”推进至“功能网络构建”阶段。传统垂直堆叠打印依赖硬质水凝胶维持形态,直接抑制神经突延伸与跨层突触形成。水平条带策略结合50 μm超薄设计与软性纤维蛋白基质,使功能性神经环路在2-5周内快速建立,打破了类器官成熟周期长、内部缺氧、细胞比例不可控的局限。学界对“体外能否构建具备定向投射与代谢偶联的人源神经组织”的争议由此转向标准化平台开发。

临床/转化价值:

与我们产品的关联:


与我们的产品

产品 关联度 应用场景
Cellink BIO X / BIO X6 ⭐⭐⭐⭐⭐ 论文使用商用挤出式生物打印机,该平台可直接复现其水平条带沉积策略、50 μm层厚控制与纤维蛋白墨水参数,实现多细胞比例精准共打印。
3Brain HD-MEA / CorePlate ⭐⭐⭐⭐ 论文依赖膜片钳与光遗传学验证电生理,HD-MEA可实现无标记、高通量同步记录打印组织的自发网络爆发与跨条带诱发电位,大幅降低单细胞记录门槛。
Celvivo ⭐⭐⭐ 打印组织需长期维持薄层结构的营养交换,Celvivo微流控灌流系统可替代传统静态培养,防止边缘细胞缺氧并支持长达180天的成熟与疾病表型稳定表达。

参考文献

  1. Yan Y, Li X, Gao Y, et al. 3D bioprinting of human neural tissues with functional connectivity. Cell Stem Cell. 2024;31(2):260-274. DOI: 10.1016/j.stem.2023.12.009
  2. Lancaster MA, Knoblich JA. Generation of cerebral organoids from human pluripotent stem cells. Nat Protoc. 2014;9(10):2329-2340. DOI: 10.1038/nprot.2014.147
  3. Giandomenico SL, Mierau SB, Gibbons GM, et al. Cerebral organoids at the air-liquid interface generate diverse nerve tracts with functional output. Nat Neurosci. 2019;22(4):669-679. DOI: 10.1038/s41593-019-0350-2
  4. Bhaduri A, Andrews MG, Mancia Leon W, et al. Cell stress in cortical organoids impairs molecular subtype specification. Nature. 2020;578(7793):142-148. DOI: 10.1038/s41586-020-1972-0
  5. Li Y, Muffat J, Omer A, et al. Induction of expansion and folding in human cerebral organoids. Cell Stem Cell. 2017;20(3):385-396.e3. DOI: 10.1016/j.stem.2016.11.017

转发语:3D打印不再只是“搭积木”,这篇Cell子刊用水平条带策略+软性纤维蛋白墨水,让人源神经组织在几周内长出真正的功能性突触网络,还能精准复现亚历山大病的谷氨酸清除缺陷。做神经环路和胶质细胞互作的团队可以直接抄作业。


联系人:李东伟
📞 18045130660 🌐 https://www.biokingdom.top


📥 下载原文PDF:Cell Stem Cell 2024 3D生物打印人源神经组织