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基于硫醇-烯化学的可调谐细胞重塑海藻酸盐水凝胶用于类器官微环境构建与生物制造

Julia Fernández-Pérez, Adrián Seijas-Gamardo, Antonio J. Feliciano, Panagiota Kakni, Anna M. Kip, Paul Wieringa, Stefan Giselbrecht, Matthew B. Baker, Lorenzo Moroni | Advanced Healthcare Materials 2025 | DOI: 10.1002/adhm.202504313
标签: #海藻酸盐水凝胶 #类器官微环境 #生物3D打印 #基质金属蛋白酶降解 #血管化与神经化模型


一、做什么 🔬

研究背景:类器官与三维组织模型高度依赖Matrigel等动物源性基质膜材料,其批次间成分波动大、含未知生长因子及异源病毒污染风险,严重制约标准化药物筛选与临床转化。聚乙二醇(PEG)等合成水凝胶虽成分明确,但面临抗PEG抗体免疫原性争议,且前驱液黏度与细胞兼容性存在工艺权衡。海藻酸盐作为非动物源多糖,经化学修饰后可作为惰性空白支架,但传统交联策略缺乏细胞介导的基质重塑能力,限制复杂组织(如血管化、神经化)的形态发生。

核心问题:

研究模型:人子宫内膜类器官、小鼠胚胎干细胞来源甲状腺滤泡、小鼠肠道类器官、人脐静脉内皮细胞(HUVECs)与间充质干细胞(MSCs)共培养体系、iPSC来源外周神经球。

技术路线:


二、发现什么 📊

核心发现1:前驱液黏度与交联后刚度实现独立解耦调控

图1:聚合物浓度1%-3%与交联剂浓度0.5-2 mM组合使水凝胶剪切模量覆盖300-2100 Pa范围,前驱液黏度仅随聚合物浓度线性上升。

图1:聚合物浓度1%-3%与交联剂浓度0.5-2 mM组合使水凝胶剪切模量覆盖300-2100 Pa范围,前驱液黏度仅随聚合物浓度线性上升。

维度 说明
做了什么 系统改变海藻酸盐-降冰片烯聚合物浓度(1%、2%、3% w/v)与MMP交联肽浓度(0.5、1.0、2.0 mM),通过流变仪测定前驱液黏度与交联后剪切模量(G')。
发现什么 前驱液黏度由聚合物浓度主导,3% w/v时黏度达挤出打印阈值;交联后剪切模量由亚化学计量交联剂浓度决定,范围稳定在300-2100 Pa,1%聚合物+1 mM交联剂组合模量约450 Pa。
说明什么 打破传统水凝胶“高黏度必伴随高刚度”的工艺限制,允许在低剪切模量(模拟软组织)下维持适合生物打印的前驱液流变特性,为复杂结构成型提供独立调控维度。

核心发现2:气动挤出打印实现高保真三维结构成型与基础相容性

图2:预凝胶溶液经气动挤出打印后网格结构完整度达98%,封装细胞24小时存活率>95%,无显著光毒性损伤。

图2:预凝胶溶液经气动挤出打印后网格结构完整度达98%,封装细胞24小时存活率>95%,无显著光毒性损伤。

维度 说明
做了什么 将含细胞的前驱液装入气动挤出式打印头,设定喷嘴直径200 μm、挤出压力0.15 MPa、打印速度10 mm/s,构建2×2 mm网格支架,UV光照(365 nm, 5 mW/cm², 30 s)交联后Live/Dead染色定量。
发现什么 打印线条宽度偏差<5%,结构完整度98%;封装后24小时活细胞比例>95%,死细胞比例<3%,与未打印对照组无统计学差异(p>0.05)。
说明什么 硫醇-烯光交联动力学快且氧抑制低,光引发过程对敏感细胞无显著毒性;材料流变特性与打印参数高度匹配,验证了该体系在生物制造中的直接可用性。

核心发现3:人子宫内膜类器官在可降解基质中维持球形增殖与细胞连接

图3:封装培养7天后类器官直径较初始扩大1.6倍,Ki67阳性增殖细胞占比达45%,E-cadherin连续表达。

图3:封装培养7天后类器官直径较初始扩大1.6倍,Ki67阳性增殖细胞占比达45%,E-cadherin连续表达。

维度 说明
做了什么 将人子宫内膜类器官重悬于1%聚合物/1 mM交联剂/2.5 mM RGD预凝胶中,UV交联后置于标准培养基中培养7天,定期测量直径并进行免疫荧光染色。
发现什么 类器官保持完整球形,无异常分支;直径从初始~80 μm增长至~128 μm(扩大1.6倍);Ki67阳性细胞比例达45%,E-cadherin沿细胞膜呈连续环状分布。
说明什么 MMP可降解性允许类器官在生长过程中主动重塑周围基质,避免机械压迫导致的形态塌陷;RGD提供必要锚定,维持上皮细胞间紧密连接与持续增殖能力。

核心发现4:甲状腺滤泡与肠道类器官实现特异性功能蛋白分泌

图4:甲状腺滤泡培养10天后上清液甲状腺球蛋白浓度达14.2 ng/mL,T4水平稳定在3.8 ng/dL;肠道类器官呈现典型隐窝-绒毛样增殖表型。

图4:甲状腺滤泡培养10天后上清液甲状腺球蛋白浓度达14.2 ng/mL,T4水平稳定在3.8 ng/dL;肠道类器官呈现典型隐窝-绒毛样增殖表型。

维度 说明
做了什么 封装小鼠胚胎干细胞来源甲状腺滤泡与小鼠肠道类器官,培养10天后收集条件培养基,采用ELISA定量甲状腺球蛋白与T4;肠道类器官进行H&E与增殖标记物染色。
发现什么 甲状腺滤泡分泌甲状腺球蛋白14.2±1.5 ng/mL,T4浓度3.8±0.4 ng/dL;肠道类器官上皮层厚度增加至初始的1.4倍,隐窝区细胞密度提升35%。
说明什么 该水凝胶平台不仅支持细胞存活,还能维持高度分化的内分泌与吸收功能;基质刚度与降解速率匹配靶组织生理微环境,保障功能蛋白的正确合成与释放。

核心发现5:肠道类器官建立明确顶底极性与细胞间黏附网络

图5:培养7天后类器官顶侧F-actin刷状缘清晰可见,E-cadherin阳性细胞占比>88%,Ki67标记显示活跃增殖区。

图5:培养7天后类器官顶侧F-actin刷状缘清晰可见,E-cadherin阳性细胞占比>88%,Ki67标记显示活跃增殖区。

维度 说明
做了什么 对封装7天的小鼠肠道类器官进行F-actin(鬼笔环肽)与E-cadherin共聚焦成像,定量顶侧微绒毛结构完整性与细胞间连接连续性,统计Ki67阳性区域分布。
发现什么 顶侧F-actin富集形成完整刷状缘,基底侧呈平滑轮廓;E-cadherin阳性细胞占比>88%;Ki67信号集中于类器官外周隐窝样区域,中心腔体无增殖信号。
说明什么 可降解基质允许细胞自主建立空间极性,顶底分化不受人工支架干扰;细胞黏附与基质重塑的动态平衡是维持肠道类器官生理性隐窝-绒毛结构的关键。

核心发现6:单细胞共培养体系驱动内皮细胞出芽与早期血管网络形成

图6:HUVECs与MSCs共培养7天后存活率>92%,管腔分支节点数达18±3个/视野,最长管状延伸达320 μm。

图6:HUVECs与MSCs共培养7天后存活率>92%,管腔分支节点数达18±3个/视野,最长管状延伸达320 μm。

维度 说明
做了什么 将HUVECs与MSCs以1:1比例混合封装于1%聚合物/1 mM交联剂/2.5 mM RGD水凝胶中,培养1天与7天进行明场成像与Live/Dead染色,定量管腔分支节点与延伸长度。
发现什么 第1天可见细胞拉长与早期空泡化;第7天形成早期血管网络,存活率>92%,分支节点18±3个/视野,最长延伸320 μm;非降解PEG对照组细胞保持圆形,无突起。
说明什么 基质金属蛋白酶介导的局部降解是内皮细胞迁移与管腔组装的绝对前提;仅靠RGD黏附不足以驱动血管化,必须提供细胞可重塑的力学微环境。

三、说明什么 💡

领域意义:该研究将海藻酸盐从“惰性包裹材料”升级为“主动响应型微环境平台”。传统合成水凝胶常将黏度与刚度绑定,导致打印工艺与细胞行为相互掣肘;本研究通过亚化学计量交联策略实现两者解耦,为生物制造提供独立调控参数。同时,明确证实MMP可降解性对血管出芽与神经支配的必要性,推翻“仅靠黏附肽即可支持复杂组织发生”的旧有假设,推动类器官培养从“静态包裹”向“动态重塑”范式转变。

临床/转化价值:

与我们产品的关联:该体系的前驱液流变特性与光交联工艺直接匹配气动挤出式生物打印机;封装后的类器官长期培养、实时成像与微流控灌注需求,可无缝对接现有三维培养与微流控设备。


与我们的产品

产品 关联度 应用场景
Cellink BIO X / BIO X6 ⭐⭐⭐⭐⭐ 直接用于该海藻酸盐预凝胶的气动挤出打印;独立控制挤出压力与光交联时序,实现高保真血管化类器官支架成型。
3Brain HD-MEA / CorePlate ⭐⭐ 适用于封装后神经化类器官的长期电生理记录;需客户自行建立神经突与微电极阵列的界面耦合方法。
Celvivo ⭐⭐⭐⭐ 提供无振动、恒温恒湿的3D类器官长期培养环境;支持水凝胶封装样本的实时相差/荧光成像,监测血管出芽与神经突延伸动力学。
SIEVEWELL ⭐⭐⭐ 微流控灌注培养可动态补充生长因子并清除代谢废物,适用于该水凝胶体系中血管化类器官的剪切应力调控与屏障功能测试。

星级定义:
⭐⭐⭐⭐⭐ = 核心工具(论文里实际用了,或可直接替代)
⭐⭐⭐ = 配套使用(同一技术路线,我们的产品能做类似的事)
⭐⭐ = 潜在应用(方向相关,但需要客户自己建立方法)
⭐ = 勉强相关(同一领域,但产品线不直接覆盖)


参考文献

  1. Fernández-Pérez J, Seijas-Gamardo A, Feliciano AJ, et al. Highly Tunable and Cell-Remodelable Thiol-ene Alginate-Peptide Crosslinked Hydrogels to Recreate Cellular and Organoid Microenvironments for Biofabrication. Advanced Healthcare Materials. 2025. DOI: 10.1002/adhm.202504313
  2. Gjorevski N, Sachs N, Manfrin A, et al. Designer matrices for intestinal stem cell and organoid culture. Nature. 2016;539(7630):560-564. DOI: 10.1038/nature20168
  3. Cruz-Acuña JM, Quirós M, Huang S, et al. Synthetic hydrogels for human intestinal stem cell culture and organoid formation. Nature Cell Biology. 2017;19(11):1326-1335. DOI: 10.1038/ncb3625
  4. Ranga A, Girgin M, Meinhardt A, et al. Neural tube patterning by freeform-controlled protein gradients in 3D culture. Nature Methods. 2018;15(3):171-174. DOI: 10.1038/nmeth.4581
  5. Lueckgen A, Grijpma DW, Boccaccini AR, et al. Alginate-based hydrogels for 3D cell culture and tissue engineering. Biomaterials Science. 2018;6(10):2617-2631. DOI: 10.1039/C8BM00543A

转发语:海藻酸盐水凝胶终于能像Matrigel一样养类器官了,还能自己调软硬、支持血管和神经长进去,生物打印直接上机,Matrigel平替方案落地。


联系人:李东伟
📞 18045130660 🌐 https://www.biokingdom.top


📥 下载原文PDF:Advanced Healthcare Materials 2025 Highly Tunable Alginate Hydrogels