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鸟类视网膜轴突跳跃式传导的结构与功能特征

Christoph T. Block, Malte T. Ahlers, Christian Puller, Max Manackin, Dipti R. Pradhan, Martin Greschner | Science 2019 | DOI: 10.1101/2022.07.04.498722
标签: #多电极阵列 #视网膜神经节细胞 #髓鞘化 #跳跃传导 #3Brain #电生理


一、做什么 🔬

研究背景:哺乳动物视网膜神经节细胞轴突在视网膜内保持无髓鞘状态,以维持神经纤维层的光学透明度。鸟类视网膜是已知例外,其神经纤维层内存在部分髓鞘化,但髓鞘分布规律、郎飞结形成机制及其对动作电位传导速度的实际影响长期缺乏直接功能证据。学界对“髓鞘化是否必然带来高速传导”以及“视网膜内髓鞘化如何平衡光学透明与信号传递效率”存在认知空白。

核心问题:

研究模型:欧洲鹌鹑与鸽子离体视网膜组织(结合高密度CMOS多电极阵列记录与免疫荧光成像)。

技术路线:


二、发现什么 📊

核心发现1:鸟类视网膜神经节细胞轴突存在明显的跳跃式传导与连续传导两种模式

图1:电学图像显示非跳跃式轴突传导速度为0.8 m/s,跳跃式轴突传导速度达2.0 m/s,信号沿轴突呈周期性高低振幅交替分布。

图1:电学图像显示非跳跃式轴突传导速度为0.8 m/s,跳跃式轴突传导速度达2.0 m/s,信号沿轴突呈周期性高低振幅交替分布。

维度 说明
做了什么 使用64×64电极CMOS阵列记录欧洲鹌鹑视网膜神经节细胞放电,计算触发平均电位并沿时间维度投影生成二维电学图像,手动追踪轴突路径并提取沿程信号波形,计算局部极大值与极小值比值作为连续性指数。
发现什么 记录到333条跳跃式轴突与164条非跳跃式轴突。跳跃式轴突平均传导速度为1.24 ± 0.35 m/s,非跳跃式为0.71 ± 0.12 m/s。跳跃式信号在电学图像上呈现高振幅区域与低振幅反向极性区域交替分布,距离-时间关系呈线性。
说明什么 证实鸟类视网膜神经纤维层内确实存在功能性的髓鞘化跳跃传导,且髓鞘化并非均匀提升所有轴突速度,低速区存在显著重叠,提示髓鞘化在视网膜内受光学透明度与传导速度的双重约束,打破了“有髓鞘必高速”的线性假设。

三、说明什么 💡

领域意义:传统神经科学认为视网膜内髓鞘化会严重破坏光学通路,因此哺乳动物视网膜主动抑制髓鞘形成。该研究通过高密度电生理成像直接证实,鸟类视网膜采用“部分髓鞘化+受控跳跃传导”的策略,在维持透明度的同时实现特定轴突的快速信号传递。研究将传导速度的决定因素从单一“结间长度”修正为“同时激活节点数×结间长度÷节点激活时间”的多维协同模型,为理解中枢神经系统局部髓鞘化的功能可塑性提供了定量框架。

临床/转化价值:

与我们产品的关联:论文核心依赖3Brain CMOS高密度阵列实现轴突级时空电活动成像。若需在该研究基础上开展长期髓鞘发育动态观测或视网膜类器官共培养电生理验证,可引入3D生物打印构建标准化组织模型,或利用活体培养系统延长离体组织记录窗口。


与我们的产品

产品 关联度 应用场景
Cellink BIO X / BIO X6 ⭐ 勉强相关。可用于构建视网膜神经节细胞与少突胶质细胞共培养体系,研究髓鞘化发育的三维微环境调控,但无法替代MEA的轴突级电生理分辨率。
3Brain HD-MEA / CorePlate ⭐⭐⭐⭐⭐ 核心工具。论文实际使用的CMOS阵列技术,42 μm电极间距直接实现跳跃节点定位与传导速度量化,适用于视网膜/脑片高分辨时空电生理成像。
Celvivo ⭐⭐ 潜在应用。可用于离体视网膜切片或类器官的长期恒温灌注培养,维持组织代谢活性以延长MEA记录时间窗口,支持多时间点髓鞘化动态观测。
SIEVEWELL ⭐ 勉强相关。适用于高通量视网膜细胞药物筛选或毒性测试,但微孔结构无法提供轴突传播路径的空间解析,不适用于跳跃传导机制研究。

参考文献

  1. Arancibia-Cárcamo, I. L., Ford, M. C., Cossell, L., Ishida, K., Tohyama, K., & Attwell, D. Node of Ranvier length as a potential regulator of myelinated axon conduction speed. ELife. 2017. DOI: 10.7554/eLife.23329
  2. Brill, M. H., Waxman, S. G., Moore, J. W., & Joyner, R. W. Conduction velocity and spike configuration in myelinated fibres: Computed dependence on internode distance. Journal of Neurology, Neurosurgery, and Psychiatry. 1977. DOI: 10.1136/jnnp.40.8.769
  3. Litke, A. M., Bezayiff, N., Chichilnisky, E. J., Cunningham, W., Dabrowski, W., Grillo, A. A., Grivich, M., Grybos, P., Hottowy, P., Kachiguine, S., Kalmar, R. S., Mathieson, K., Petrusca, D., Rahman, M., & Sher, A. What does the eye tell the brain?: Development of a system for the large-scale recording of retinal output activity. IEEE Transactions on Nuclear Science. 2004. DOI: 10.1109/TNS.2004.832706
  4. Radivojevic, M., Franke, F., Altermatt, M., Müller, J., Hierlemann, A., & Bakkum, D. J. Tracking individual action potentials throughout mammalian axonal arbors. ELife. 2017. DOI: 10.7554/eLife.30198

转发语:鸟类视网膜轴突居然自带“绝缘层”?这篇研究用高密度电极阵列直接拍到了动作电位在视网膜内的跳跃传导,发现髓鞘化并不等于绝对高速,传导速度其实是节点数量、结间长度和激活时间共同算出来的。做神经电生理和视网膜研究的同行可以重点关注。


联系人:李东伟
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📥 下载原文PDF:Science 2019 Saltatory axonal conduction in the avian retina