3D Cell Explorer 用户手册（中文翻译 + 分析拆解）
产品：Nanolive 3D Cell Explorer（含 3D Cell Explorer-fluo 荧光版）
原始手册：Nanolive SA（瑞士洛桑）— www.nanolive.ch
手册结构：9 章 / 60 页 / 24 张图（本文选取 16 张核心图）
一、这是什么？🔬
3D Cell Explorer 是 Nanolive 推出的无标记活细胞三维断层成像显微镜，核心技术叫 "全息层析成像"（Holographic Tomography）——用一束 Class I 激光（λ=520 nm，样品曝光 0.2 mW/mm²，对细胞无光毒性）穿透活细胞，通过记录透射光的折射率（Refractive Index, RI）分布重建出细胞内部的三维结构。
1.1 与传统显微镜的三大区别
| 维度 | 传统光学显微镜 | 3D Cell Explorer |
|---|---|---|
| 标记 | 必须荧光/染色 | 完全无标记（基于 RI） |
| 维度 | 2D 或共聚焦 3D（需切片） | 单帧即 3D 重建（0.5 fps） |
| 光毒性 | 激光/汞灯/LED 损伤细胞 | Class I 激光，0.2 mW/mm²，长时间活细胞成像无光毒 |
| 数据 | 灰度 + 荧光通道 | RI 三维体数据 + 数字染色（基于物理参数，可定量化） |
1.2 两个版本
- 3D Cell Explorer：纯 RI 全息层析（明场模式仅用于样品搜索）
- 3D Cell Explorer-fluo：在 RI 基础上叠加 3 通道荧光（最多 4 通道滤光片配置）—— 同一个视野既能看"结构"也能看"化学"，且荧光和 RI 数据共定位（同一次采集）
1.3 全套交付件（共 16 件，包装清单见原文 P17）
| 编号 | 配件 | 数量 |
|---|---|---|
| (1) | 3D Cell Explorer 主机 | 1 台 |
| (2) | USB 2.0 线 | 1 根 |
| (3) | USB 3.0 线 | 1 根 |
| (4) | 供电线 | 1 根 |
| (5) | 电源线 | 1 根 |
| (6) | 清洁套装 | 1 套 |
| (7) | 可重复使用防尘罩 | 1 个 |
| (8) | WEEE 认证报告 | 1 份 |
| (9) | 物镜（MO）保护帽 | 1 个 |
| (10) | BNC 线（仅 fluo 版） | 1 根 |
| (11)-(16) | CoolLED 照明系统全套（仅 fluo 版） | LED 光源 + 直流电源 + IEC 电缆 + USB 2.0 + 液体光导光纤 LLG + 3 个激发光滤光片支架 |
二、仪器长什么样？📷
2.1 三视图（正面、侧面、背面）
图1 — 仪器三视图。从这三个角度可以看清旋转臂、XY 平台、扫描头、相机、底部接口的相对位置。
2.2 关键元件术语
图2 — 7 个核心元件：Scanning head（扫描头）/ Rotating arm（旋转臂）/ XY stage（XY 样品平台）/ Z knob（Z 轴调焦旋钮）/ Microscope objective（显微镜物镜，60X NA 0.8）/ Camera（CMOS 相机，1024×1024，165 fps）/ Peripheral mirror（周边镜，用于 3D 层扫）
2.3 荧光版与 CoolLED 光源
fluo 版与基础版外形一致，区别在背部多一个 LLG 液体光导光纤接口和 BNC 触发接口。
CoolLED pE-800 系列光源：可同时安装 3-4 个激发光滤光片（DAPI 蓝色 / FitC 绿色 / TritC 橙色 / Cy5 红色），切换速度 < 100 μs，每个通道寿命 > 20,000 小时。
三、技术规格详解 📋
3.1 3D Cell Explorer（基础版）
| 项目 | 规格 | 备注 |
|---|---|---|
| 尺寸（宽×深×高） | 380 × 170 × 445 mm | 桌面型 |
| 重量 | 8 kg | 单人可搬 |
| 运行环境 | 20–30°C / 100-240 VAC / 50-60 Hz / 1.0-0.5 A | 温控关键 |
| 相机 | CMOS，165 fps，1024×1024 像素，USB 3.0 | 本机采样 |
| 显微镜物镜 | 60X 放大，非油镜 | 免维护 |
| 激光 | Class I（λ=520 nm，样品曝光 0.2 mW/mm²） | 无需护目 |
| 视野（FoV） | 85 × 85 × 30 µm | 单次 3D 重建范围 |
| 横向光学分辨率 | 200 nm | 比共聚焦弱，但够看亚细胞 |
| 轴向光学分辨率 | 400 nm | |
| 横向采样（本机输出） | 183 nm | |
| 轴向采样（本机输出） | 482 nm | |
| 层析成像帧速率 | 0.5 fps（每 2 秒一次完整 3D 重建） | 慢但够用 |
| 自调整时间 | < 90 秒 | 取决于光学厚度 |
3.2 3D Cell Explorer-fluo + CoolLED
| 项目 | 全息层析 | 荧光成像 |
|---|---|---|
| 尺寸 | 380×170×445 mm | 77×186×162 mm（CoolLED 控制器） |
| 重量 | 8 kg | 4 kg |
| 环境温度 | 20–30°C | 5–35°C |
| 电压 | 100-240 VAC | 110-240 VAC / 2 A |
| 相机 | USB3.0 CMOS Sony IMX174（QE 70% @ 545 nm，暗噪 6.6 e⁻，动态范围 73.7 dB） | — |
| 视野 | 90×90×30 µm | 90×90 µm |
| 横向分辨率 | 200 nm | 400 nm |
| 通道数 | 同时最多 7 个（RI 数字染色） | 3 通道荧光（标配 3 + 可升级 4） |
| 帧速率 | 0.5 fps | 3 fps/通道 |
| 滤光片配置 | — | 标配：FitC+TritC+DAPI（蓝色） 或 FitC+TritC+Cy5（红色） 满配 4 个：TritC 和 Cy5 滤光片在通道 3 上互换 |
3.3 计算机要求（必须项）
⚠️ GPU 是硬门槛 — 没有 NVIDIA 独显 8GB 跑不动 STEVE 全功能。
| 项目 | 最低要求 |
|---|---|
| CPU | 2.00 GHz 四核或更快 |
| 内存 | 16 GB DDR3 起步 |
| 硬盘 | STEVE 装系统盘 2 GB 即可，采集数据单独 1 TB 盘（0.5 fps 持续采集每小时 1-2 GB） |
| GPU | NVIDIA 独显 8 GB 专用显存（4 GB 不够） |
| USB | 至少 1 个 USB 3.0 口（相机用） |
| 系统 | Windows 10 64 位 + 最新 NVIDIA 驱动 + USB 3.0 驱动 |
| 网络 | 装软件时需联网 |
💡 供应商可提供"经过测试验证的电脑/笔记本清单"（原文 P15）—— 客户买机器前咨询供应商要这份，避免自己攒机踩坑。
四、首次启动 — 物理安装 9 步 🔌
4.1 拆箱与定位
图3 — 包装内 16 件组件。fluo 版多一根 BNC 线和 CoolLED 照明系统。
步骤 1：将主机放在稳定、平坦、水平、坚固的工作台上。抓持部位是底部或两侧，严禁提相机部位（P19 图 4 警示）。误操作损坏不在保修内。
步骤 2：撕下一次性塑料包装膜，拔下红色乙烯基物镜保护帽。
4.2 CoolLED 照明系统接线（仅 fluo 版）
⚠️ 安全第一 — 装 LLG 之前不要先接主电源。
步骤 3：CoolLED 照明系统放在显微镜旁边、垂直于平面，每侧留 200 mm 散热空间（P22 图 d）。
步骤 4：把 3 个激发光滤光片支架（标配 DAPI / FitC / TritC 或 Cy5）插入 CoolLED 顶部槽位，注意方向（P21）。
步骤 5-6：在 CoolLED 端装 LLG。
图a — 从 LLG 一端拆下红色乙烯基盖。
图b — 把 LLG 尽可能插入 CoolLED 顶部接口，用 1.5 号内六角扳手固定（力矩不能过大，会损坏 LLG 头端降低耦合效率）。
图c/d — 装好 LLG 的 CoolLED 整体外观，垂直放置，每侧 200 mm 散热间距。
步骤 7：在显微镜端装 LLG。
图g — LLG 另一端插入显微镜侧面的光纤接口，3 颗固定螺丝依次拧到物理接触后轻轻加力。任何对 LLG 头端的物理损伤都会导致到样品的耦合光功率不可逆损失。
💡 LLG 弯曲半径铁律（P24 图 i/j）：
- 短期弯曲半径 R > 40 mm
- 长期弯曲半径 R > 75 mm
- 实测 90 mm 弯曲最稳
- 严禁拉伸、扭结、接触锋利物 —— 内部玻璃光纤会断，导致光输出减少
步骤 8-9：CoolLED 接入电源（直流电源→CoolLED，电源插头平面向内 P25 图 m）+ USB 2.0（CoolLED→PC）+ BNC（CoolLED→显微镜触发）。
4.3 主机电源 + USB 连线
| 步骤 | 动作 | 注意事项 |
|---|---|---|
| 1 | USB 3.0 线连接显微镜侧面 → PC | 拧紧固定螺丝，必须插 PC 的 USB 3.0 口（不是 2.0） |
| 2 | USB 2.0 线连接显微镜背面 → PC | 任意 USB 口 |
| 3 | 电源线 → 电源 → 插座 | 确认电源开关关闭再插 |
| 4 | fluo 版：CoolLED 电源线 → IEC → 插座 | CoolLED 自身无电源开关，插入即通电 |
4.4 装 STEVE 软件
去 www.nanolive.ch/register 注册机器（序列号在机器底部/送货单/快速指南背面），下载 STEVE。重要：启动 STEVE 时右键 → "使用图形处理器运行" → 选 "Nvidia 高性能"（不选高性能 = 集显跑，巨慢）。
五、正确移动 / 运输 ⚠️
这一段在原文 P30-P37，全部是运输保护要点，客户买完常忽略导致返修。
5.1 移动前必做
- 拔所有线：电源 + USB 2.0 + USB 3.0（fluo 版再加 BNC + LLG）
- 用 Z 轴旋钮把样品平台升到顶部位置（不升顶 = 移动时撞坏物镜）
- 样品平台用红色固定螺钉进一步锁定
- fluo 版：用红色乙烯基帽盖 LLG 两端 + 黑色乙烯基帽盖显微镜物镜
5.2 样品平台固定
左侧图示 = 运输过程中高风险损坏的姿势（平台没升顶）。右侧图示 = 正确姿势（Z 旋钮升到顶，红色固定螺钉锁死）。
红色固定螺钉位置。拆装操作工作台时必须同步拆装这颗螺钉。
5.3 握持姿势
原文 P37 图示：底部或两侧抓持，不要提样品平台 / 不要提旋转臂 / 不要提相机。
5.4 LLG 端部保护
- 不连接时：两端都盖红色乙烯基帽（P36 图 o / 图 p）
- LLG 是精细光学仪器，二氧化硅端面划伤不可逆
- 弯曲半径铁律：短期 > 40 mm / 长期 > 75 mm
- 清洁：用擦镜纸 + 酒精
六、样品制备建议 🧫
原文 P38 只给了概要，详细 SOP 在供应商的**《Nanolive 实验准备 protocol》**（中文版）和 Nanolive 官方的 Best Staining Practices（英文版）。
6.1 适用的样品容器
| 容器 | 适用情况 |
|---|---|
| 玻璃盖玻片 | 固定细胞（贴壁后固定） |
| FluoroDish™ 培养皿 | 活细胞长时间成像（首选） |
不适用：玻璃底以外的塑料底、悬浮细胞直接滴（光路穿过液柱太长会衰减）。
6.2 关键经验法则（原文 P38）
- 光照强度极低 → 适合长期（> 1 周）活细胞成像
- 与标准培养耗材兼容 → 无需特殊样品制备
- 浸没介质折射率必须设对 → STEVE 启动采集时会弹窗让选（水 = 1.33，DMEM ≈ 1.34，油性介质必须查清楚再输）
七、光学元件清洁步骤 🧹
原文 P39-P40：清洁是唯一用户可做的维护，其他都不要拆（拆了保修失效）。
总原则：
- 只用 Texwipe™ Microdenier 或 Alpha series 清洁拭子 + 乙醇/异丙醇
- 从光学表面中心向边缘单向刮（不要来回拖，会把污染物推回中心）
- 每次接触表面换一根新拭子（避免二次污染）
- 优先清洁最暴露的面（污染概率高）
7.1 显微镜物镜（最频繁清洁）
图7 — 物镜是最容易污染的元件（样品就在它上面），需定期清洁。
7.2 旋转臂扫描镜（偶尔清洁）
图8 — 旋转臂上的扫描镜暴露较少，不需要频繁清洁。
7.3 旋转臂中央镜（最少清洁）
图9 — 中央镜不外露，只需偶尔清洁。
💡 物镜不用时强烈建议套红色乙烯基帽（P33 警示）—— 防尘是清洁的最省事方式。
八、STEVE 软件 — 怎么采集和染色 🎨
原文 P41-P55 是软件使用说明。STEVE = "Software for Tomographic Explorer for Visualization and Evaluation"。
8.1 软件核心功能
| 模块 | 功能 |
|---|---|
| 显微镜控制 | 单次 3D 采集、延时 3D 采集、辅助明场选视野、全自动自调整 |
| 2D 视图 | X-Y 断层切片 + 用户定义染色叠加 |
| 3D 视图 | 三维体绘制（体素模式 / 表面模式）+ 截图 + AVI 视频录制 |
| 数字染色 | 基于折射率（RI）而非颜色的物理参数染色 —— 可定量化 |
| 数据导出 | raw / tiff / obj / png / jpeg + 专有 .vol/.vo1x 压缩格式 |
| 数据注释 | 每个测量文件可加自定义属性（X size / Acq Time / 备注） |
| 半自动更新 | 新版本自动提示，关软件 → 维护工具 → 更新组件 |
8.2 软件界面（图10）
图10 — STEVE 主界面分区：① 2D 视图（左侧）② 3D 视图（右上）③ 面板查看器（中下，RI × RI 梯度二维空间）④ 染色选取（右下）⑤ 按钮区 + 滑块 + 时间线 + 染色属性。
8.3 启动一次采样的完整流程
- 开软件 → 打开 3D Cell Explorer 电源 → 等 STEVE 自动识别（必须 USB 3.0 接对，否则报 Connection failure err.3.3）
- 白光选视野 → 用显微镜的 XY + Z 旋钮找细胞（白光模式只是辅助用，不拍数据）
- 选浸没介质 → STEVE 弹窗让选 RI（水 / DMEM / 自定义值）—— 错选 = 重建成像模糊
- 单次采集 → 点 "3D 按钮" 或 Microscope → Single Shot → 选 RI → 自动开始（0.5 fps = 2 秒出结果）
- 数字染色 → 在 2D 视图画感兴趣区 → 选颜色 → 染色显示在面板视图
- 保存 → Save 按钮 → 默认 .vol 格式（只有 STEVE 能读）
8.4 延时采集
点 "4D 按钮" 或 Microscope → Time Lapse → 弹 2 个对话框：
- 浸没介质选择
- 采集速度 + 持续时间（最长 96 小时）
可设自动停止或手动停止。
8.5 数字染色 — STEVE 的灵魂
为什么重要：因为原始数据是 RI 三维体（看起来是灰度的），数字染色让你能"把不同 RI 值标成不同颜色"，相当于无标记的多重免疫荧光。
操作 10 步（原文 P51-P52 详细）：
- 选有意义的断层（2D 视图拖动 / 滑块）
- "+" 新染色
- 起名（可选）
- 选颜色
- 在 2D 视图画感兴趣区（像素会高亮，松开鼠标 → 根据选定像素计算染色范围）
- 染色显示在面板视图（RI × RI 梯度空间）
- 调不透明度 / 边缘柔和度 / 染色形状
- 加更多染色 → 重复
- 一次采集下最多 7 个 RI 数字染色 + 3 个荧光通道 = 10 个标记同时呈现
- 染色可隐藏 / 删除 / 改色
💡 数字染色的精度依赖"样本制备的折射率均一性"——这是 Best Staining Practices 文档的核心内容。原文 P56 留了下载链接，中文版咨询供应商。
8.6 数据保存与导出
图16 — Save 按钮 → 默认存 .vol 格式。
图17 — File → Export → 可选导出范围（单帧/全帧/每隔 N 帧）、数据类型（RI 值 / 荧光通道）、文件格式（raw / tiff / obj / png-jpeg）。
注意：
- .vol 格式 = 只有 STEVE 能读，别的软件打不开（要二次分析必须导出 tiff / raw / obj）
- obj 格式 = 3D 重建的标准网格，可导入 Imaris / Amira / Arivis 等做高级渲染
- 4D 数据（时间序列）导出时可裁剪 A-B 标记之间的范围
九、故障排除 🔧
原文 P57-P58 故障码清单。整理如下：
| 错误码 | 模块 | 原因 + 解决 |
|---|---|---|
| err.1.1 | 校准失败 | 样品上方液体过多 / 旋转臂路径有物体阻挡 / 培养皿壁挡光 → 移动到皿中心位置 |
| err.1.4 | 校准失败 | 样品吸收性太强（如浓染料 / 厚组织）→ 换一个区域或联系供应商客服 |
| err.2.1 | 采集失败 | 当前位置不行 → 换区域 / 清洁物镜 / 检查样品制备是否符合 protocol |
| err.3.1 | 连接失败 | USB 2.0 没接好 / 显微镜没开 → 重启 PC + 重插线 |
| err.3.2 | 连接失败 | USB 3.0 没拧紧 / 没接 PC 的 USB 3.0 口 |
| err.3.3 | 连接失败 | USB 3.0 线被 PC 识别成 USB 2.0（驱动问题）→ 换 USB 3.0 端口 / 装主板 USB 3.0 驱动 |
| err.3.4 | 连接失败 | 显微镜初始化失败（旋转臂受阻）→ 关电源 → 检查旋转臂能否自由转动 |
| err.3.6 | 连接失败 | 显微镜需要维修 → 联系供应商 |
| err.3.7 | 连接失败（仅 fluo） | 荧光模块连接失败 → 检查 CoolLED 电源 + USB |
| err.3.8 | 连接失败 | 固件更新错误 → 联系客服 |
| err.5.1 | 处理失败 | GPU 不满足要求（至少 NVIDIA 2 GB 专用显存）→ 升 NVIDIA 驱动 |
十、关键安全/合规要点 ⚠️
原文 P1-P5 安全说明（产品销售时必读，客户常忽略）。
- 激光 Class I（λ=520 nm）：对眼睛无害，但禁止非授权打开盖子进入激光路径
- CoolLED 光源（仅 fluo）：可能发射紫外线（取决于波长配置）→ 避免直视光源 + 用导光光纤时不遮盖（火灾风险）
- EN/IEC 61010-1:2010 + EN62471:2008 双重认证（光源风险组 3）
- 清洁禁用易燃/有毒溶剂；可用乙醇/异丙醇（远离火源，通风良好）
- 不可在潮湿环境使用
- 用户有责任避免生物样品污染（每次用完清洁）
- 任何维护前断开电源
十一、产品定位与销售要点 💼
本节从产品手册反推的销售视角（Robin 9X Bio 业务参考）
11.1 真实应用场景（手册 P8-P10）
| 场景 | 用 3D Cell Explorer 的理由 |
|---|---|
| 细胞分裂追踪 | 无标记 + 长时程 + 单细胞分辨率，不干扰细胞周期 |
| 细胞形态监测 | 3D 重建 = 看得见整体形态变化（凋亡 / 分化 / 药物反应） |
| 胞内运输 | 无标记可看囊泡 / 细胞器 RI 变化 |
| 细胞重塑 / 死亡（凋亡 vs 坏死） | 长时程能区分"程序性死亡"和"被动死亡"的形态动力学差异 |
| 药物监测 | 治疗浓度下的细胞形态变化实时观察，比 endpoint 测活更敏感 |
| 纳米颗粒内化 | 无标记可直接看纳米颗粒进入细胞的过程（RI 差异） |
| 体外受精 | 卵母细胞 / 胚胎发育追踪 |
| 组织成像 | 病理切片 + 组织形态学 |
| 蛋白定位 / 药物跟踪（仅 fluo） | RI 结构 + 荧光化学共定位 = 一次采集 = 两个维度信息 |
| 亚细胞结构分析（仅 fluo） | 长期 3D + 3 通道荧光 + 7 通道数字染色 = 10 标记同时呈现 |
11.2 与 9X Bio 现有产品线的差异化
| 维度 | CelVivo ClinoStar | 3Brain MEA | Nanolive 3D Cell Explorer |
|---|---|---|---|
| 原理 | 旋转悬浮培养（无支架） | 微电极阵列电生理 | 全息层析（无标记 + RI 重建） |
| 是否标记 | — | 电生理无标记 | 无标记 |
| 读出 | 球体形态 / 切片染色 | 电信号（spikes / LFP） | RI 3D 体数据 + 数字染色 |
| 时间分辨率 | 数天-数周（培养周期） | ms 级（电生理） | 0.5 fps（2 秒/帧 3D 重建） |
| 空间分辨率 | 球体级（μm-mm） | 单细胞 / 亚细胞 | 200 nm 横向 / 400 nm 轴向（亚细胞） |
| 侵入性 | 无 | 电极贴附 | 无（光毒性极低） |
| 典型应用 | 类器官长期培养 / 药筛 | 神经 / 心肌 / 视网膜电生理 | 无标记活细胞形态学 / 药筛 / 蛋白定位（fluo） |
Nanolive 在 9X Bio 产品组合中的独特定位：
- ✅ 填补"无标记高分辨形态学"空白 — CelVivo 培养但需要切片才能看内部、3Brain 看电信号，Nanolive 直接看活细胞内部三维结构
- ✅ 药筛场景的中间环节 — CelVivo 培养球体 → 加药 → Nanolive 监测形态变化（无需每个时间点收样切片）
- ✅ 与 3Brain 互补（非竞争） — 3Brain 看电活动，Nanolive 看形态变化，同一颗细胞可双平台读出（前提是客户有跨学科需求）
- ✅ 与 Cellink 互补 — Cellink 做生物打印支架，Nanolive 在打印后做"打印质量/细胞在支架内分布"的无标记评估
11.3 销售常见客户问题 Q&A
| 客户问题 | 答案（来自手册） |
|---|---|
| "需要荧光标记吗？" | 不需要（基础版）。基础版完全无标记。fluo 版才需要荧光（用于共定位）。 |
| "会损伤细胞吗？" | 不会。Class I 激光 0.2 mW/mm²，是共聚焦的千分之一。光毒性低到可做一周以上活细胞成像。 |
| "能看多深？" | Z 方向 30 µm。贴壁细胞单层够用，球体或厚组织需要切片或光透明。 |
| "分辨率多少？" | 横向 200 nm / 轴向 400 nm。比共聚焦弱（200 nm 是横向极限），但对细胞器 / 囊泡尺度足够。 |
| "数据多大？" | 0.5 fps 持续采集 ≈ 1-2 GB/小时。建议配 1 TB 数据盘单独存。 |
| "能导出到 Imaris 吗？" | 能。导出 obj 格式直接进 Imaris / Amira / Arivis。 |
| "能加荧光吗？" | 可以。买基础版后想升级 → 联系供应商加装 CoolLED + LLG + 物镜改造。 |
| "保修多久？" | 手册未列明，需向供应商确认。误操作损坏不在保修（P19 警示）—— 客户培训很重要。 |
11.4 客户选型建议（基于规格）
| 客户类型 | 推荐版本 | 理由 |
|---|---|---|
| 纯形态学 / 长期活细胞 | 基础版 | 便宜 30-40%，无标记足够 |
| 已有荧光实验 / 想结合蛋白定位 | fluo 版 | 3 通道荧光 + 7 通道数字染色 = 10 标记同时 |
| 神经 / 心肌电生理 | 不推荐 | 这类需求用 3Brain 更对路 |
| 类器官 / 球体培养监测 | 基础版即可 | 配合 CelVivo 用，无标记看球体内部结构 |
| 药物筛选（高内涵） | fluo 版优先 | 多通道 + 长时程 + 自动化 |
| 组织病理 | 看厚度 | < 30 µm 用基础版，> 30 µm 需切片 + 光透明 |
十二、关键资料链接 🔗
- Nanolive 官网：http://nanolive.ch
- Nanolive 应用案例：http://nanolive.ch/applications
- 滤光片配置详情：https://www.semrock.com/SetDetails.aspx?id=3297
- CoolLED 光源数据：http://www.coolled.com/product-detail/led-wavelengths/
- 中文 SOP《Nanolive 实验准备 protocol》：联系供应商
- 中文版《Nanolive 实验图伪彩上色训练》：联系供应商
- 客户注册 + 软件下载：https://www.nanolive.ch/register
📥 原文 PDF 链接
📄 3D Cell Explorer 用户手册 PDF（中文版，60 页，2.2 MB）
联系人｜李东伟
📞 18045130660
🌐 主页：https://www.biokingdom.top